Real-titer慢病毒滴度測定（Q-PCR）試劑盒
| 參考價 | ￥2970.00 |
- 公司名稱 江蘇樂賽生物科技有限公司
- 品牌其他品牌
- 型號
- 所在地上海市
- 廠商性質生產廠家
- 更新時間2022/7/18 15:12:55
- 訪問次數 944
| 100 test | 2970.00元 | 100 盒 可售 |
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| 供貨周期 | 現貨 | 規(guī)格 | 100 test |
|---|---|---|---|
| 貨號 | GE-20006-100 | 應用領域 | 醫(yī)療衛(wèi)生,環(huán)保,化工,制藥/生物制藥,綜合 |
本試劑盒能夠快速、簡便、高效地對基于HIV-1構建的慢病毒進行有效滴度測定。通過對感染慢病毒的細胞基因組DNA中整合的慢病毒插入片段拷貝數進行Q-PCR測定，計算出初始病毒的有效滴度。
產品特點
?本產品采用感染病毒后靶細胞基因組作為模板，測得數據更真實
?基于Taqman探針法開發(fā)本產品，結果更準確
?適用于所有基于HIV-1病毒構建的慢病毒滴度測定
產品成分
試劑名稱 | 內容 | 數量 |
Solution 1 | 標準品DNA模板（5x10^9 c/μl） | 100μl |
Solution 2 | Lenti-primer (10μM) | 40μl |
Solution 3 | Lenti-probe –FAM/TAMRA(2.5μM) | 80μl |
Solution 4 | Taq (probe qPCR) (2X) | 1ml |
Solution 5 | ROXI(50X) | 40μl |
Solution 6 | ROX II(50X) | 80μl |
其他所需材料
細胞基因組DNA抽提試劑（離心柱法）
超純水
Q-PCR用96孔板或8連管
定量PCR儀
1.5ml無酶離心管用于樣品制備
無酶槍尖
Real-titer慢病毒滴度測定（Q-PCR）試劑盒
操作步驟
1.取感染72h后的293T細胞，胰酶消化制備單細胞懸液，細胞計數，得細胞數為N;
2.利用細胞基因組抽提試劑盒提取293T細胞基因組DNA，測定基因組DNA總量為G (μg)，稀釋至50ng/μl備用；
注：此步驟推薦使用分離柱式基因組抽提試劑盒3.根據下表稀釋標準品及基因組DNA樣品：
標準品管 | 樣品管 | ||||||
| # | 稀釋倍數 | Water | 標準品 | 拷貝數/μl | 稀釋倍數 | Water | 樣品(50ng/μl) |
| 1 | 10^1 | 45μl | 5μl | 5.45x10^8 | 10 | 45μl | 5μl |
| 2 | 10^2 | 45μl | 5μl of 1# | 5.45x10^7 | 50 | 40μl | 10μl of #1 |
| 3 | 10^3 | 45μl | 5μl of 2# | 5.45x10^6 | 100 | 45 | 5μl of #1 |
| 4 | 10^4 | 45μl | 5μl of 3# | 5.45x10^5 | |||
| 5 | 10^5 | 45μl | 5μl of 4# | 5.45x10^4 | |||
| 6 | 10^6 | 45μl | 5μl of 5# | 5.45x10^3 | |||
梯度稀釋取樣前，需充分混勻；
4.根據下表配制反應液，每組配制3個復孔：
試劑 | 用量 | 終濃度 |
標準品或樣本 | 2μl | *1 |
Lenti-primer (10μM) | 0.4μl | 0.2μM |
Lenti-probe (2.5μM) | 0.8μl | 0.1μM |
Taq (probe qPCR) (2X) | 10μl | 1X |
ROX | *2 | |
Water | 補至20μl |
*1：樣本除步驟3中稀釋的3種濃度外，另需一組未稀釋樣本，即總量為100ng/孔；另需設置陰性對照孔，即不添加任何DNA模板；
*2：根據所使用儀器添加：
適用儀器 | |
ROX I (終濃度1X) | 7300 Real-Time PCR System/ StepOnePlus Real-Time PCR System |
ROX II (終濃度0.5X) | 7500 Real-Time PCR System/7500 Fast Real-Time PCR System |
無需ROX | Thermal Cycler Dice Real Time System series/ LightCycler 480 System/ CFX96 Real-Time PCR Detection System |
5.上機，按照以下程序進行Q-PCR反應：
變性 (1 Cycle)：95℃ 30s
擴增 (40 cycles)：95℃ 5s + 60℃ 30
注：可根據具體使用儀器自行調整程序。6.計算標準曲線：計算每組標準品的平均Ct值，以平均Ct值為X，Loge(copy number)為Y，生成標準曲線Y=A*Ct+B。標準曲線R2需大于0.99；
7.計算樣本平均Ct值，帶入標準曲線計算出copy number=n。
注：以Ct值在標準曲線范圍內的數據為準，若樣本Ct值超過或低于標準曲線Ct值，需對樣本稀釋倍數進行相應調整。8.計算病毒滴度：舉例
Titer(TU/ml)=[n*d*(G/0.1)/N]*Nori/V
其中：n=步驟7中計算所得拷貝數；d=所用Ct值對應的稀釋倍數(1, 10, 50, 100)；G=基因組提取所得DNA總量(μg)；N=基因組提取所用細胞數；Nori=病毒感染時細胞數；V=病毒感染時病毒用量(ml)。
計算各個Ct值位于標準曲線范圍內的不同稀釋倍數組病毒滴度，取平均值為最終結果。
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