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總蛋白提取步驟和注意事項(xiàng)（有機(jī)沉淀法）
點(diǎn)擊次數(shù)：9527 發(fā)布時(shí)間：2013-3-27
從植物葉片提取的植物總蛋白不但是家養(yǎng)類(lèi)動(dòng)物生長(zhǎng)發(fā)育的重要營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)，而且是具有潛力的新一代營(yíng)養(yǎng)保健食品，因而掌握植物葉蛋白的提取方法至關(guān)重要，讓我們一起了解這整個(gè)實(shí)驗(yàn)原理和過(guò)程吧。
一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/span>
熟悉植物葉蛋白的幾種提取原理和方法，了解其意義及其應(yīng)用價(jià)值。
二、實(shí)驗(yàn)原理
植物葉蛋白或稱綠色蛋白濃縮物（leaf protein concentration，簡(jiǎn)稱LPC），是從新鮮植物葉片中提取的高質(zhì)量濃縮蛋白質(zhì)，不僅是畜禽生長(zhǎng)發(fā)育和生產(chǎn)畜產(chǎn)品的主要營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)，而且目前也正成為人類(lèi)的保健營(yíng)養(yǎng)理想食品之一。天然蛋白存在于為數(shù)甚多的植物體內(nèi)，對(duì)其分離應(yīng)依據(jù)人們的利用目的及提取蛋白含量和品質(zhì)加以考慮。
天然蛋白質(zhì)一般在溶液中呈穩(wěn)定的親水膠體狀態(tài)，故LPC 亦稱葉蛋白膠。其特點(diǎn)是：
（1）水化作用 即蛋白質(zhì)分子表面附有能有效防止蛋白質(zhì)分子沉淀析出的水化膜;（2）電荷排斥作用 水化膜外還有電荷層（具陰、陽(yáng)離子）能有效地防止蛋白質(zhì)分子的凝集。故溶液蛋白質(zhì)顆粒（溶質(zhì)）呈溶解狀態(tài);（3）欲提取植物組織中的蛋白質(zhì)必須利用溶解度的差異進(jìn)行分離純化（如鹽析、有機(jī)溶劑分級(jí)沉淀法、疏水層析、結(jié)晶、加熱、離心分離等法），利用分子大小和形狀差異進(jìn)行分離純化（分子篩層析法）;還可利用電荷性質(zhì)的差異分離純化（離子交換法）。只要?jiǎng)?chuàng)造上述影響因素，即可使蛋白質(zhì)從植物葉片中分離并沉淀出來(lái)。
植物葉蛋白提取一般遵循如下基本原則：盡可能提高樣品蛋白的溶解度，抽提zui大量的總蛋白，減少蛋白質(zhì)的損失;減少對(duì)蛋白質(zhì)的人為修飾;破壞蛋白與其他生物大分子的相互作用，并使蛋白質(zhì)處于*變性狀態(tài)。根據(jù)該原則，植物葉蛋白制備過(guò)程中一般需要有四種試劑①離液劑：尿素和硫脲等;②表面活性劑：又稱去垢劑，早期常用NP-40、Tritonx-100等非離子型去垢劑，離子型去垢劑有SDS、膽酸鈉、LiDS 等，還有象CHAPS（含它的蛋白溶液可以凍存）與Zwittergent 等雙性離子去垢劑;
③還原劑：DTT、DTE、TBP、Tris-base 等;④蛋白酶抑制劑及核酸酶：EDTA、PMSF、蛋白酶抑制劑混合物（Protease inhibitor cocktails）等，如為了去除緩沖液中存在的痕量重金屬離子，可在其中加入0.1～5mmol/LEDTA，同時(shí)使金屬蛋白酶失活。
三、儀器和試劑
儀器
離心機(jī)、移液器、研缽、離心管、冰箱。
試劑
1. 20mL 樣品提取緩沖液：2.5mL 0.5mol/LTris-HCl
3. -20℃下預(yù)冷丙酮（含0.07%β-巰基乙醇）
4. -20℃預(yù)冷的80%丙酮（含0.07%β-巰基乙醇）
5. 飽和硫酸銨溶液 稱取（NH4）2SO4 80g，加蒸餾水100mL，加熱50～60℃，攪拌溶解，室溫過(guò)夜，用濃氨水調(diào)pH 至7.0
6. 0.05molpH7.0的磷酸緩沖液10%NaCl 0.1mol 醋酸95%乙醇
7. 植物葉片（草本植物、木本植物葉片等都可）
四、 實(shí)驗(yàn)步驟
植物葉蛋白的提取主要有鹽析法、有機(jī)溶劑沉淀法、加熱法（含逐步和快速加熱）、 離心分離法、結(jié)晶和重結(jié)晶法等。依據(jù)今后的開(kāi)發(fā)方向（以飼料為基礎(chǔ)，以食品、飲品為開(kāi)發(fā)方向）及簡(jiǎn)便易行和使用的原則，主要采用鹽析法、加熱法和有機(jī)溶劑法分離提取葉蛋白（冷提和熱提）。不同的提取方法，對(duì)樣品的處理方式、程度和要求不同，結(jié)果也有差異。
（一）（NH4）2SO4 沉淀法提取葉蛋白
取0.3g 植物葉蛋白，用液氮充分研磨轉(zhuǎn)入離心管中，加入3mL 提取緩沖液，搖勻并放在4℃條件下提取1h，充分溶解蛋白后，4℃10000r/min 離心20min，棄沉淀，上清液中加入（NH4）2SO4 ，混勻1h，按1：2（v/v）加入-20℃預(yù)冷的80%丙酮，混勻后4℃12000r/min 離心10min，沉淀在-20℃冰箱中放置20min，使丙酮*揮發(fā)后加適量上樣緩沖液，待沉淀充分溶解后，4℃12000r/min 離心5min，取上清液即為所提取的葉蛋白溶液。
（二）改良丙酮沉淀法提取葉蛋白
取0.3g 左右的植物葉片，用液氮研磨，色素多的可按材料鮮重的10%加入PVP，并將充分研磨過(guò)的樣品轉(zhuǎn)入離心管中，加入4mL 的提取緩沖液，搖勻并放在4℃條件下提取1h，充分溶解蛋白。放置后的樣品充分搖勻，4℃10000r/min 離心30min，棄沉淀，上清液中加入2.5～3倍體積的村-20℃條件下過(guò)夜，讓蛋白充分沉淀。之后，4℃10000r/min 離心30min，其上清，沉淀置于-20℃下，使丙酮*揮發(fā)，如有必要加入上樣緩沖液溶解沉淀。緩沖液用量300ul，沉淀充分溶解后，轉(zhuǎn)移至1.5mL 離心管中，4℃12000r/min 離心15min ，取上清液即為所提取的葉蛋白溶液。
該方法提取的蛋白質(zhì)，提取效率高，雜質(zhì)干擾少，電泳結(jié)果蛋白條帶清晰，數(shù)量多。
（三）植物葉片總蛋白的提取—三氯醋酸—丙酮沉淀法
①在液氮中研磨適量的葉片;
②懸浮于含10%的三氯醋酸和含0.07%β-巰基乙醇（可用DTT 代替）的丙酮溶液在-20℃條件下冰浴;
③讓蛋白質(zhì)沉淀過(guò)夜后離心（4℃ 10000r/min 離心30~60min），棄上清;
④重懸沉淀浮于含0.07%β-巰基乙醇的預(yù)冷丙酮溶液中;
⑤離心（同上）后真空干燥沉淀;
⑥用上樣緩沖液溶解沉淀，離心;
⑦Brandford 法定量蛋白，然后分裝至Eppendof 管中保存在-78℃備用。
（四）分步提取可溶性葉蛋白
（1）蛋白質(zhì)浸出 ①水溶性蛋白質(zhì)浸出：用0.05molpH7.0的磷酸緩沖液（或蒸餾水）將樣品制成勻漿液，然后離心15min（4000r/min），收集上清液即蛋白質(zhì)浸出液，再將沉淀物按上述操作重復(fù)兩次。②鹽溶性蛋白質(zhì)浸出用10%NaCl 將前者剩余沉淀物分離提取兩次，收集蛋白質(zhì)浸出液。
（2）蛋白質(zhì)沉淀用0.1mol 醋酸將蛋白質(zhì)浸出液pH 值調(diào)至蛋白質(zhì)等電點(diǎn)（pH4.5左右），即8體積蛋白質(zhì)浸出液加入1體積0.1mol 醋酸，混勻，離心15min（3000r/min），棄去上清液，沉淀物即為可溶性葉蛋白。
（3）蛋白質(zhì)收集于沉淀物中加入95%乙醇，混勻，用定量濾紙過(guò)濾或抽濾，待風(fēng)干后收集。
植物總蛋白的提取方法以有機(jī)鹽沉淀法為主，本文中介紹到的（NH4）2SO4 沉淀法、丙酮沉淀法、和分步提取法，各個(gè)方法各有特點(diǎn)和適用范圍，各位如有更好的植物總蛋白提取方法，歡迎補(bǔ)充。