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十招搞定免疫熒光

2015-1-22  閱讀(1424)

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免疫熒光是標記免疫技術發(fā)展zui早的一種,它是在免疫學、生物化學和顯微鏡技術的基礎上建立起來的一項技術,通過將抗體與一些示蹤物質結合,利用抗原抗體反應進行組織或細胞內抗原物質的定位。免疫熒光步驟包括,細胞固定和通透,封閉,孵育一抗,二抗等。除了這些基本步驟,以下建議可以幫助您獲得更好的實驗結果。

細胞固定和通透


為達到*的檢測效果,細胞需要經過固定和通透。這些步驟非常關鍵,細胞和抗原需要保證*的結構,并利于抗體與抗原結合。通常情況下,需要通過以下步驟得以實現:細胞用2%-4%多聚甲醛固定,之后用0.1%皂角苷或0.02%的Triton X-100進行通透。前者是比較溫柔的處理,但是對于核內抗原可能無效,需要用到Triton。使用皂角苷進行通透時,要注意它會引起細胞膜的可逆性通透,也就是除了在通透初期,在每個抗體孵育環(huán)節(jié)都需要進行通透。另外,細胞可以用冰甲醇進行同時固定和通透,可以避免去垢劑的使用。

抗體特異性


免疫熒光需要用到特異性非常強的抗體,可以避免高背景和不理想的蛋白定位結果。在大多數情況下,純化抗體的效果很好,但是正確的對照可以幫助定位抗原。使用只有二抗染色的片子作為陰性對照,有利于減少降低背景干擾。

合適的抗體稀釋比例


通過優(yōu)化抗體稀釋比例來優(yōu)化染色,通常情況下1ug/ml的純化抗體或者1:100-1:1000的抗血清足夠達到特異性染色的結果。但在能保證低背景染色的前提下,可以通過增加濃度來提高信號強度。如果是*次使用該抗體或測定某抗原,強烈建議濃度梯度實驗。

優(yōu)化緩沖液和封閉劑


盡管很多抗原在常見的Buffer如PBS中可以很好的被染色,但是對于某些目的抗原,更換一下含有不同離子的緩沖液,比如鈣、鎂、鉀等,可以帶來很大程度上的改善。Rockland可提供優(yōu)化過的IHC用封閉緩沖液,同樣適用于熒光染色實驗。

選擇正確的二抗


如果您需要做免疫實驗,我們強烈建議您選擇進行過預吸附的二抗進行單染實驗;如果是雙重甚至是多重染色,那么必須使用預吸附的二抗。同時,請優(yōu)先選擇來自同一物種的二抗。

使用合適的細胞密度


選擇合適的細胞數量進行染色,當細胞數量過多時,細胞結構不好,導致染色背景深,低細胞密度,會使細胞貼壁不佳,狀態(tài)不好。

多重染色


對同一樣本進行兩個不同抗原的檢測時,可以用各自的抗體進行同時染色,但要求兩個一抗的種屬來源不同,標記物不同,而二抗的種屬來源需保持一致。

降低背景


高背景是免疫熒光常見的問題,解決此問題可以用二抗來源的正常血清代替BSA做封閉液,降低抗體濃度,增加洗滌次數,洗滌至少三次,每次五分鐘,推薦洗滌液為PBS+0.05%Tween。

封片


作為免疫熒光的zui后一步,可以提高折射率,保護樣品。

數據分析


觀察整體樣片時,選擇具有代表性的細胞進行數據獲取與分析。

詳情見:http://www.rockland-inc。。com/IF-Microscopy-Tips.aspx?utm_source=tips&utm_medium=&utm_campaign=marker 

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