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NK細胞活性測定：LDH法實驗方法原理    活細胞的胞漿內含有LDH。正常情況下，LDH不能透過細胞膜，當細胞受到NK細胞的殺傷后，LDH釋放到細胞外。LDH 可使乳酸鋰脫氫，進而使NAD還原成NADH，后者再經(jīng)遞氫體吩嗪二甲酯硫酸鹽（PMS）還原碘硝基氯化四氮唑（INT），INT 接受H＋被還原成紫紅色甲月贊類化合物。在酶標儀上用490nm比色測定。
實驗材料    YAC-1細胞
試劑、試劑盒    Hank's液RPMI1640*培養(yǎng)液乳酸鋰乳酸鈉硝基氯化四氮唑吩嗪二甲酯硫酸鹽Tris-HCl緩沖液NP-40TritonNAD試劑盒
儀器、耗材    酶標儀鑷子篩網(wǎng)紗布離心機培養(yǎng)板
實驗步驟    
1、LDH基質液的配制

乳酸鋰5×10-2mol/L

硝基氯化四氮唑（INT） 6.6×10-4mol/L

吩嗪二甲酯硫酸鹽（PMS） 2.8×10-4mol/L

氧化型輔酶Ⅰ（NAD） 1.3×10-3mol/L

將上述試劑溶于0.2mol/L的Tris-HCl緩沖液中（pH8.2）

2、靶細胞的傳代（YAC-1細胞）

實驗前24h將靶細胞進行傳代培養(yǎng)。應用前以Hank's液洗3次，用RPMI1640*培養(yǎng)液調整細胞濃度為4×105個/mL。

3、脾細胞懸液的制備（效應細胞）

無菌取脾，置于盛有適量無菌Hank's液的小平皿中，用鑷子輕輕將脾磨碎，制成單細胞懸液。經(jīng)200目篩網(wǎng)過濾，或用4層紗布將脾磨碎，或用Hank's液洗2次，每次離心10min（1000r/min）。棄上清將細胞漿彈起，加入0.5mL滅菌水20秒，裂解紅細胞后再加入0.5mL2倍Hank’s液及8mLHank’s液，1000rpm，10min離心，用1mL含10%小牛血清的RPMI1640*培養(yǎng)液重懸，用1%冰醋酸稀釋后計數(shù)（活細胞數(shù)應在95%以上），用臺酚蘭染色計數(shù)活細胞數(shù)（應在95%以上），后用RPMI1640*培養(yǎng)液調整細胞濃度為2×107個/mL。

4、NK細胞活性檢測

取靶細胞和效應細胞各100μL（效靶比50：1），加入U型96孔培養(yǎng)板中；靶細胞自然釋放孔加靶細胞和培養(yǎng)液各100μL，靶細胞大釋放孔加靶細胞和1％NP40或2.5%Triton各100μL；上述各項均設三個復孔，于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4h，然后將96孔培養(yǎng)板以1500r/min離心5min，每孔吸取上清100μL置平底96孔培養(yǎng)板中，同時加入LDH基質液100μL，反應3min，每孔加入1mol/L的HCl30μL，在酶標儀490nm處測定光密度值（OD）。

按下式計算NK細胞活性，受試樣品組的NK細胞活性顯著高于對照組的NK細胞活性，即可判定該項實驗結果陽性。

                                     反應孔OD－自然釋放孔OD

NK細胞活性（%）＝ ────────────────── ×100%

                                   大釋放孔OD－自然釋放孔OD

四、數(shù)據(jù)處理及結果判定

NK細胞活性需進行數(shù)據(jù)轉換，X＝Sin-1 ，式中P為NK細胞活性，用小數(shù)表示，然后再進行方差分析，在進行方差分析時，需按方差分析的程序先進行方差齊性檢驗，方差齊，計算F值，F(xiàn)值< F0.05，結論：各組均數(shù)間差異無顯著性；F值≥F0.05，P≤0.05，用多個實驗組和一個對照組間均數(shù)的兩兩比較方法進行統(tǒng)計；對非正態(tài)或方差不齊的數(shù)據(jù)進行適當?shù)淖兞哭D換，待滿足正態(tài)或方差齊要求后，用轉換后的數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計；若變量轉換后仍未達到正態(tài)或方差齊的目的，改用秩和檢驗進行統(tǒng)計。
收起 
注意事項    
1. 靶細胞和效應細胞必須新鮮，細胞存活率應大于95％。

2. 比色時環(huán)境溫度應保持恒定。

3. LDH基質液應臨用前配制。

4. 在一定范圍內，NK細胞活性與效靶比值成正比。一般效靶比值不應超過100。