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原代細(xì)胞的培養(yǎng)及建系之原代細(xì)胞取材篇

時(shí)間:2023/9/26閱讀:934
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細(xì)胞的來(lái)源多樣,培養(yǎng)方法也各不相同,凡是來(lái)源于胚胎、組織器官及外周血,經(jīng)特殊分離方法制備而來(lái)的原初培養(yǎng)的細(xì)胞稱(chēng)之為原代細(xì)胞。原代細(xì)胞經(jīng)分散接種之手段稱(chēng)為傳代。凡能經(jīng)傳代方式進(jìn)行再次培養(yǎng)的細(xì)胞稱(chēng)為傳代細(xì)胞。若能穩(wěn)定生長(zhǎng)傳至10~20代以上的細(xì)胞可確立為細(xì)胞系。若有條件能開(kāi)展單細(xì)胞克隆、純化,經(jīng)大量擴(kuò)增后所形成的生物學(xué)特性穩(wěn)定的克隆化細(xì)胞群,稱(chēng)之為細(xì)胞株或克隆細(xì)胞。此過(guò)程稱(chēng)為細(xì)胞的純化或細(xì)胞克隆。這些基本技術(shù)是從事細(xì)胞培養(yǎng)工作的基礎(chǔ),只有熟悉和掌握了基本技術(shù),才可能更快捷地學(xué)習(xí)和掌握其他方法,本章重點(diǎn)敘述常用的基本技術(shù)。   
第一節(jié) 原代細(xì)胞的取材   
人和動(dòng)物細(xì)胞的取材是原代細(xì)胞培養(yǎng)成功的首要條件,是進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)的第一步,若取材不當(dāng),將會(huì)直接影響細(xì)胞的體外培養(yǎng),現(xiàn)將取材的基本要求和注意事項(xiàng)敘述如下:   
一、取材的基本要求   
1)取材要注意新鮮和保鮮 新鮮組織易于培養(yǎng)成功,取材時(shí)應(yīng)盡量在4~6h內(nèi)能制作成細(xì)胞,盡快入箱培養(yǎng),若不能即時(shí)培養(yǎng),應(yīng)將組織浸泡于培養(yǎng)液內(nèi),于4存放。若組織塊較大,應(yīng)在清除表面血液、壞死組織、脂肪和結(jié)締組織后,切碎于培養(yǎng)液內(nèi)4存放,但時(shí)間不能超過(guò)24h。對(duì)于已切碎的組織或血液、淋巴組織應(yīng)加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基,按細(xì)胞凍存方式于液氮中冷凍保存。   
2)取材應(yīng)嚴(yán)格無(wú)菌 所取標(biāo)本材料應(yīng)在無(wú)菌條件下進(jìn)行,為了確保無(wú)菌,對(duì)所取材料若疑有污染的可能,應(yīng)將所取組織在含高濃度抗菌素(400單位/mL)甚至加入適量的兩性霉素B10%達(dá)克寧液的培養(yǎng)液內(nèi)于4下存放2小時(shí)以上,再用PBS2~3次,以確保所取材料無(wú)菌。要用無(wú)菌包裝的器皿或事先消毒好的帶少許培養(yǎng)液(內(nèi)含400單位/mL抗菌素)的小瓶等便于攜帶的物品來(lái)取材,所取材料應(yīng)避免接觸有毒有害的化學(xué)物質(zhì),如碘、汞等。   
3)取材和原代細(xì)胞制作時(shí),要用鋒利的器械,如手術(shù)刀或剃須刀片切碎組織,盡可能減少對(duì)細(xì)胞的機(jī)械損傷。   
4)要仔細(xì)去除所取材料上的血液、脂肪、壞死組織及結(jié)締組織,切碎組織時(shí)應(yīng)避免組織干燥,可在含少量培養(yǎng)液的器皿中進(jìn)行。   
5)取材應(yīng)注意組織類(lèi)型、分化程度、年齡等,一般來(lái)講,胚胎組織較成熟個(gè)體組織容易培養(yǎng),分化低的較分化高的組織容易生長(zhǎng),腫瘤組織較正常組織容易培養(yǎng)。取材時(shí)應(yīng)盡量選用易培養(yǎng)的組織進(jìn)行培養(yǎng)。   
6)原代細(xì)胞取材時(shí)要同時(shí)留好組織學(xué)標(biāo)本和電鏡標(biāo)本。對(duì)組織的來(lái)源、部位、包括供體的一般情況要做詳細(xì)的記錄,以備以后查詢(xún)。   
二、各類(lèi)組織的取材技術(shù)   
(
皮膚和粘膜的取材   
皮膚和粘膜是上皮細(xì)胞培養(yǎng)的重要組織來(lái)源,主要取自于手術(shù)過(guò)程中的皮片,方法似外科取斷層皮片手術(shù)操作,但面積一般2~4cm2即可,這樣局部沒(méi)有疤痕,若對(duì)燒傷皮膚進(jìn)行上皮細(xì)胞膜片移植,可從大腿或臀部取較大皮片,可取2~4cm2皮片,但取材時(shí)不要用碘酒消毒;若培養(yǎng)上皮細(xì)胞,取材時(shí)不要切取太厚,盡可能去除所攜帶的皮下或粘膜下組織;若欲培養(yǎng)成纖維細(xì)胞,則反之。皮膚粘膜與外界相通部位,因表面細(xì)菌、霉菌很多,取材時(shí)應(yīng)嚴(yán)格消毒,必要時(shí)要用高濃度抗菌素和適量?jī)尚悦顾?/span>B漂洗、浸泡。   
(
)內(nèi)臟和實(shí)體瘤的取材   
內(nèi)臟除消化道外基本是無(wú)菌的,但取材時(shí)要明確和熟悉所需組織的類(lèi)型和部位,實(shí)體瘤取材時(shí)要取腫瘤細(xì)胞豐富的區(qū)域,要避開(kāi)破潰、壞死液化部分,以防污染,盡量去除混雜的結(jié)締組織,否則培養(yǎng)后,由于成纖維細(xì)胞的生長(zhǎng)給以后的培養(yǎng)工作增加困難。對(duì)于一些特殊細(xì)胞培養(yǎng)的取材,詳見(jiàn)后面有關(guān)章節(jié)。   
(
)血液細(xì)胞的取材   
血液及淋巴組織中的血細(xì)胞、淋巴細(xì)胞的取材,一般多抽取靜脈外周血,或從淋巴組織中(如脾、扁桃體、胸腺、淋巴結(jié)等)分離細(xì)胞,取材時(shí)應(yīng)注意抗凝,通常采用肝素抗凝,常用肝素濃度為8~10u/mL血,抽血的針筒也要用肝素濕潤(rùn),若從血站取來(lái)的獻(xiàn)血員的血液,因血站不用肝素抗凝劑,常用含枸椽酸鹽抗凝,對(duì)此類(lèi)血標(biāo)本千萬(wàn)不能用含鈣、鎂離子的洗液來(lái)處理細(xì)胞,因此時(shí)的鈣、鎂離子可加速血液中凝血酶促進(jìn)血液凝固而影響收獲血細(xì)胞及淋巴細(xì)胞。此外要嚴(yán)格無(wú)菌,盡量新鮮使用。   
(
)骨髓、羊水、胸/腹水細(xì)胞取材   
取上述標(biāo)本時(shí),除嚴(yán)格無(wú)菌,注意抗凝外,還要盡快分離培養(yǎng),一般無(wú)需其他處理,離心后,用無(wú)鈣、鎂PBS洗兩次,再用培養(yǎng)液洗一次后即可培養(yǎng),不宜低溫存放。具體操作詳見(jiàn)后面有關(guān)章節(jié)。   
(
)動(dòng)物組織取材   
1
、鼠胚組織取材   
首先用引頸或氣管窒息致死法處死孕期合適的動(dòng)物,然后將其整個(gè)浸泡在含有75%酒精的燒杯中,5分鐘后(注意時(shí)間不能太長(zhǎng),以避免酒精從口或其他通道進(jìn)入體內(nèi),影響組織活力),取出動(dòng)物,在消毒過(guò)的木板上可用無(wú)菌的圖釘或大頭針固定四肢,切開(kāi)皮膚,用無(wú)菌操作法解剖取胚或用無(wú)菌止血鉗挾起皮膚、用無(wú)菌眼科剪沿軀干中部環(huán)形剪開(kāi)皮膚,用止血鉗分別挾住兩側(cè)皮膚拉向頭尾,把動(dòng)物反包,暴露軀干,然后再固定,更換無(wú)菌解剖器材,采用無(wú)菌操作法解剖取出胚胎。   
2
、幼鼠胚腎(或肺)取材   
幼鼠采用上述方法處死消毒后,腹部朝上固定在木板上,先切開(kāi)游離毛皮并拉開(kāi)至兩側(cè):然后采用無(wú)菌法打開(kāi)胸腔取肺,或背部朝上固定在木板上,先將背部毛皮切開(kāi)游離并拉向兩側(cè),然后采用無(wú)菌法從背部打開(kāi)腹腔取腎。   
(
)人胚體組織取材   
在局部先用碘酒后用75%酒精棉球消毒,無(wú)菌法取人胚肺(腎),方法與鼠類(lèi)相同。   
(
)雞(鴨)鳥(niǎo)類(lèi)胚胎組織取材   
取孵化至適當(dāng)胚齡(9~12天)的胚蛋,用照蛋燈在暗處燈檢,若有豐富血管、胚體有運(yùn)動(dòng)的胚蛋,說(shuō)明胚體發(fā)育良好,并用有色筆劃出氣室和胚體位置。將胚蛋置于蛋架上,先用溫水清洗蛋殼,再用75%酒精棉球擦干,經(jīng)碘酒、75%酒精消毒后,在無(wú)菌條件下采用無(wú)菌法用剪刀或中號(hào)鑷子打開(kāi)氣室,沿氣室邊緣去除蛋殼,再用眼科鑷撕去殼膜,暴露出雞胚,再用彎頭鑷輕挑起胚頭,取出胚胎,放入無(wú)菌平皿中,解剖取材。   

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