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上海雅吉生物科技有限公司

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PCR擴增中如何避免非特異性產(chǎn)物

閱讀:324      發(fā)布時間:2025-5-19
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pcr實驗原理:

    qPCR基于傳統(tǒng)的聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)技術(shù),通過逐漸擴增目標DNA或cDNA的數(shù)量使其可檢測。與傳統(tǒng)PCR不同的是,qPCR在擴增過程中同時進行熒光信號的實時監(jiān)測。

 

    qPCR的原理基于熒光探針(例如TaqMan探針或SYBR Green I染料)。這些探針通過與目標序列的特異性結(jié)合,在PCR過程中釋放熒光信號。

 

    SYBR Green I:該染料能與DNA雙鏈結(jié)合,當(dāng)PCR擴增產(chǎn)生新的雙鏈DNA時,SYBR Green I與其結(jié)合并發(fā)出熒光信號。

 

皰疹病毒.png

    TaqMan探針:該探針由引物和熒光探針組成,熒光探針含有一個熒光染料和一個熒光猝滅劑。在PCR擴增過程中,熒光探針通過引物特異性結(jié)合到目標序列上,并且Taqpolymerase酵素的核酸酶活性會切除掉熒光探針上的猝滅劑,導(dǎo)致熒光染料釋放出信號。

PCR擴增中避免非特異性產(chǎn)物的綜合策略

一、優(yōu)化引物設(shè)計

提高引物特異性

確保引物與目標序列高度匹配,避開非目標區(qū)域的相似序列(如通過BLAST比對驗證);

引物長度控制在18-24 bp,GC含量40–60%,避免引物二聚體或發(fā)夾結(jié)構(gòu)。

減少引物濃度

過高引物濃度易引發(fā)非特異性結(jié)合或引物二聚體,建議調(diào)整至0.1–0.5 μM。

二、調(diào)控PCR反應(yīng)條件

調(diào)整退火溫度

適當(dāng)提高退火溫度?(接近引物Tm值±2℃),增強引物與模板結(jié)合的嚴謹性,減少非特異性結(jié)合。

優(yōu)化Mg2?濃度

Mg2?濃度過高(>2.5 mM)會降低反應(yīng)特異性,需通過梯度實驗確定最佳濃度(通常1.5–2.5 mM)。

縮短延伸時間與循環(huán)次數(shù)?

延伸時間按產(chǎn)物長度設(shè)定(1 kb/min),避免過度延伸導(dǎo)致副產(chǎn)物積累;

減少循環(huán)次數(shù)(通常25–35次),防止非特異性產(chǎn)物指數(shù)級擴增。

使用熱啟動Taq酶

熱啟動聚合酶在低溫下無活性,可抑制早期非特異性擴增。

三、防污染操作

分區(qū)操作?

實驗區(qū)域分為樣本處理區(qū)、試劑配制區(qū)及擴增區(qū),避免氣溶膠污染。

使用UNG酶

添加尿嘧啶糖基化酶(UNG)降解含dU的污染產(chǎn)物,抑制殘留DNA擴增。

設(shè)置陰性對照

加入無模板對照(NTC)以監(jiān)測試劑或環(huán)境污染物。

四、模板與試劑優(yōu)化

純化模板DNA

模板降解或雜質(zhì)(如多糖、蛋白)可能引發(fā)非特異性擴增,需通過電泳或純化試劑盒驗證完整性。

調(diào)整模板用量

過高模板量會增加非特異性結(jié)合的幾率,建議按實驗體系推薦量添加(通常1–100 ng)。

五、其他輔助策略

使用降落PCR(Touchdown PCR)

初始退火溫度高于Tm值并逐漸降低,優(yōu)先擴增高特異性產(chǎn)物45。

添加增強劑?

DMSO(5–10%)、甜菜堿(1–1.5 M)等可減少模板二級結(jié)構(gòu)干擾,提升特異性。

巢式PCR

分兩輪擴增,使用外側(cè)和內(nèi)側(cè)兩對引物,降低背景干擾


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