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TUNEL法檢測細胞凋亡常見問題及解決方案

來源:翌圣生物科技(上海)股份有限公司   2020年04月24日 16:09  

TUNEL檢測細胞凋亡常見問題及解決方案

大家好,我是你們的實驗小助手小翊,上一期我們講到了細胞凋亡檢測的各種手段。這一期我們介紹其中的一種細胞凋亡檢測方法--TUNEL法,重點分析TUNEL檢測細胞凋亡常見問題及解決方案。首先要先了解一下TUNEL染色步驟,如下圖所示。

 

1 TUNEL染色操作步驟(注:細胞核染色步驟可選

用TUNEL試劑盒檢測細胞凋亡過程中,需要用到蛋白酶K、熒光素-dUTP、TdT酶等各種試劑,除此以外,還要設置陽性和陰性對照組,面對試劑盒各組分的作用以及繁瑣的操作步驟,許多人表示疑惑,下面我們就一一解答。

1. TUNEL試劑盒主要成分及功能

1)Equilibration緩沖液:用于維持一定的反應條件,緩沖液中的Mg2+降低背景,Mn2+增強染色效果。

2)蛋白酶K(Proteinase K):通透細胞膜和核膜,保證TUNEL探針進入細胞中,保證染色充分

3)熒光素-dUTP:標記3'-OH末端和作為TdT酶的底物。

4)TdT酶:催化dUTP標記3'-OH末端的關鍵酶。

2 .陽性組、陰性組、實驗組

1)陽性組用DNase酶處理,誘導細胞凋亡、暴露出3-OH末端。每次實驗做一個即可。

2)陰性組:不加TdT酶,其余操作和實驗組相同每種切片樣本需要做一個陰性對照。比如有5老鼠的肺組織切片樣本,那么就需要做5個陰性組。

3)實驗組:除了陽性組和陰性組,所有的樣本均是實驗組。

3.為什么設置陽性組、陰性組

1)陽性組用來驗證本次實驗操作和試劑盒有無問題。

2)陰性組:a.排除細胞自身凋亡以及操作過程等原因導致的非特異性染色;b.調(diào)整拍攝曝光強度。

除此以外,大家或多或少會遇到染色結果異常,包括熒光信號弱、沒有熒光信號、假陽性高、熒光背景強等問題。染色失敗的原因主要包括樣本處理不當、染色不充分、曝光時間過長等,從以下幾個方面對癥分析。

4. 熒光信號弱或沒有熒光信號

若已知細胞或者組織樣本處于細胞凋亡狀態(tài),但是用TUNEL試劑盒檢測發(fā)現(xiàn)熒光信號偏弱或沒有信號。

 

4.1樣本處理不當

1)樣本切片太厚建議適當將切片切薄一點,便于染色。

2)脫蠟和水化不充分。建議脫蠟先60 ºC 20 min,再使用二甲苯兩次5-10 min;而水化用梯度乙醇從高低濃度浸洗。

3)Proteinase K的孵育時間過短。優(yōu)化Proteinase K的孵育時間,常用時間10-30 min。4 μm左右的片子孵育10 min,30μm左右的片子孵育30 min。

4)Proteinase K濃度過低。建議蛋白酶K一般工作液濃度為20 μg/mL。

5放置在-20 ºC保存較長時間的切片不新鮮,減低染色效率。建議使用新鮮切片

4.2染色操作不當

6染色時間過短。建議一般 37 ºC 孵育60 min,可以根據(jù)凋亡損傷程度,可長至2 h,但要結合背景著色。

7)TdT酶或熒光素/酶標記的dUTP濃度過低。建議適當提高TdT酶或熒光素/酶標記的dUTP濃度。

8)TdT酶失活。建議TUNEL反應液臨用前配制,短時間在冰上保存。不宜長期保存,長期保存會導致TdT酶失活。

9)樣本干燥。加上TUNEL反應液后,請蓋上蓋玻片/保鮮膜/濕盒中進行,保證樣本均勻染色,又可防止反應液干燥

4.3熒光檢測操作不當

10)操作未避光。由于熒光易碎滅,建議標記與檢測樣本時,載玻片要避光,觀察時要盡量快。

5.非特異性染色(假陽性高)

若已知細胞或者組織樣本依然處于活細胞狀態(tài),但是用TUNEL試劑盒檢測,出現(xiàn)了非特異性染色,和處理過的熒光信號一樣強,甚至比陽性對照組熒光信號還要強。

 

5.1樣本處理不當

1使用酸性或堿性固定液,導致DNA損傷。建議使用pH中性的固定液固定組織或者細胞。

2固定液濃度過高,導致細胞自溶、DNA鏈不規(guī)則斷裂造成假陽性。建議使用4%多聚甲醛溶液(溶于PBS)。

3固定時間過長,導致細胞自溶、DNA鏈不規(guī)則斷裂、造成假陽性。建議控制固定時間在4 ℃放置25 min。

4)蛋白酶K處理時間過長,破壞核酸結構,出現(xiàn)假陽性。建議適當縮短處理時間。

5)蛋白酶K濃度過大,破壞核酸結構,出現(xiàn)假陽性。建議適當調(diào)整蛋白酶 K溶液濃度,一般工作液濃度為20 μg/mL。

5.2 染色操作不當

6)TUNEL染色時間過長。建議一般是 37 ºC 孵育60 min,可以根據(jù)凋亡損傷程度,可長至2 h,但要結合背景著色。

7充分清洗樣本。染色后PBS清洗次數(shù)可增加到5次,來避免切片的非特異性染色。

6.熒光背景強

 

6.1染色操作不當

1)TUNEL染色時間過長建議染色時間適當,一般是 37 ºC 孵育60 min,避免串色。

2)TUNEL染色液濃度過大。建議增大稀釋倍數(shù),優(yōu)化濃度。

3) 使用試劑盒提供的二價陽離子優(yōu)化反應,試劑盒中的Mg2+可降低背景,Mn2+可增強染色效果。

4)PBS充分清洗樣本。在TUNEL反應后PBS清洗次數(shù)可增加到5次,來避免切片樣本中殘留的染料。

6.2熒光檢測操作不當

5)曝光時間過長。建議調(diào)整曝光條件,先對陰性組調(diào)整無背景光,然后用這個曝光條件去拍攝實驗組(可以微調(diào),但是不需要大調(diào))。

 

 

以上就是小翊為大家整理的TUNEL實驗中可能遇到的問題及相應的建議,希望對大家有所幫助,同時也歡迎大家積極留言補充,小翊會耐心為您解答。

 

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[1] Qian Y, Wang Y, Jia F, et al. Tumor-microenvironment controlled nanomicelles with AIE property for boosting cancer therapy and apoptosis monitoring[J]. Biomaterials, 2019, 188: 96-106.  (IF 9.85)

[2] Xu T, Ding W, Ao X, et al. ARC regulates programmed necrosis and myocardial ischemia/reperfusion injury through the inhibition of mPTP opening[J]. Redox Biology, 2019, 20: 414-426.  (IF 8.37)

[3] Han Y Q, Ming S L, Wu H T, et al. Myostatin knockout induces apoptosis in human cervical cancer cells via elevated reactive oxygen species generation[J]. Redox Biology, 2018, 19: 412-428.  (IF 8.37)

[4] Liu Q, Qian Y, Li P, et al. 131 I-labeled copper sulfide-loaded microspheres to treat hepatic tumors via hepatic artery embolization[J]. Theranostics, 2018, 8(3): 785.  (IF 8.12 )

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