慢病毒包裝簡要步驟
以六孔板中的1孔為例，每個樣品需要1×106個293T細胞。
1. 取1.5 ml滅菌EP管，加入1.5 μg包裝混合質粒和0.5 μg表達質粒以及250 μl的無血清培養(yǎng)基。輕柔混勻，室溫孵育5 min。
2. 取1.5 ml滅菌EP管，取9 μl 脂質體2000 l溶于250 μl無血清培養(yǎng)基中。輕柔混勻，室溫孵育5 min。
3. 將DNA溶液和脂質體溶液輕柔混勻。室溫孵育20 min
4. 用胰酶消化并記數(shù)293T細胞。用含血清的培養(yǎng)基重懸細胞。
5. 在六孔板中每孔，加入1 ml含血清的生長培養(yǎng)基，再加入DNA-脂質體復合物。
6. 將1 ml重懸的293T細胞(1×106個細胞/ml)加入到平板中。37 ℃ CO2孵箱中孵育過夜。
7. 移除含有DNA-脂質體復合物的培養(yǎng)基移除，代之以DMEM(含丙酮酸鈉和非必須氨基酸)。
7. 轉染后48-72 h收獲含病毒的上清。3000 rpm 離心20 min，去除沉淀。
8. 病毒上清-80 ℃貯存。
包裝出來的慢病毒對NIH/3T3細胞達90%以上感染效率。

注意事項
1. 在慢病毒感染細胞前，為檢測病毒上清培養(yǎng)液內病毒的活性，并確定病毒與轉染細胞之間的比率，需要確定病毒的滴度。病毒的滴度可以通過轉染Hela細胞，然后使用抗體篩選穩(wěn)定的細胞轉染株，進行計數(shù)和數(shù)值統(tǒng)計。
2. 在慢病毒轉染細胞的過程中最重要的一步是融合，只有一些較小的慢病毒載體才能轉導進細胞，因此，病毒顆粒的吸附是慢病毒轉染的限速步驟。