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紅細胞裂解液操作步驟

來源:浙江聯(lián)碩生物科技有限公司   2023年01月31日 14:57  

操作步驟:
(一)貼壁培養(yǎng)細胞
1、取NP-40裂解液置于室溫融解混勻,加入 PMSF,使 PMSF 終濃度為1mM。
2、去除貼壁細胞的培養(yǎng)液,用PBS、生理鹽水或無血清培養(yǎng)液清洗1次,低速離心,棄上清,留取沉淀。
3、按照6孔板每孔加入150~250μl含有PMSF的NP-40裂解液,移液器輕輕吹打,使裂解液和細胞充分接觸。置于冰上或4℃裂解,通常裂解液作用于細胞1~3s內(nèi),細胞就會被裂解。
4、10000~12000g,4℃離心5~10min(如無低溫離心機,室溫下離心亦可),取上清。
5、后續(xù)的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
(二)懸浮培養(yǎng)細胞
1、取NP-40裂解液置于室溫融解混勻,加入PMSF,使PMSF終濃度為1mM。
2、低速離心懸浮細胞,棄上清,收集沉淀。
3、用手指輕彈細胞,使其松散。按照6孔板每孔細胞加入150~250μl含PMSF的NP-40 裂解液。如果細胞密度非常高可以適當(dāng)加大裂解液的用量到200~250μl。再用手指輕彈以充分裂解細胞,充分裂解后應(yīng)沒有明顯的細胞沉淀。
4、10000~12000g,4℃離心5~10min(如無低溫離心機,室溫下離心亦可),取上清。
5、進行后續(xù)的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
(三)組織樣本
1、把組織剪切成細小的碎片,越小越好。
2、取NP-40裂解液置于室溫融解混勻,加入PMSF,使PMSF終濃度為1mM。
3、取在液氮或超低溫冰箱中冷凍 30min 以上的組織,迅速研磨,研磨過程盡量控制在1~2min之內(nèi),以減少蛋白的降解。
4、按照每20mg組織加入150~250μl裂解液的比例加入含有PMSF的裂解液,冰上或4℃裂解30~60min。

 

5、步驟3、4亦可以采用如下過程:按照每20mg組織加入150~250μl裂解液的比例加入含有PMSF的NP-40裂解液。用玻璃勻漿器或組織研磨器勻漿,直至充分裂解,該過程盡量控制在1~2min之內(nèi),以減少蛋白的降解。

6、10000~12000g,4℃離心5~10min(如無低溫離心機,室溫下離心亦可),取上清。

7、進行后續(xù)的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

注意事項:
1. 為取得最佳的使用效果,盡量避免過多的反復(fù)凍融。建議將其適當(dāng)分裝成合適的量,然后置于-20℃保存。

2. 細胞裂解蛋白提取的所有操作步驟都需在冰上或4℃進行。

3. 建議在臨用前數(shù)分鐘內(nèi)加入PMSF,使PMSF的最終濃度為1mM。PMSF可以向我公司訂購。

4. 在貼壁培養(yǎng)細胞的操作步驟中,去除貼壁細胞的培養(yǎng)液后,如果血清中的蛋白沒有干擾,可以不用清洗。

5. 如果裂解不充分可以適當(dāng)添加更多的裂解液,如果需要高濃度的蛋白樣品,可以適當(dāng)減少裂解液的用量。

6. 在培養(yǎng)細胞的裂解中,如果細胞量較多,必需分裝成50~100萬細胞/離心管,然后再裂解。大團的細胞較難裂解充分,而少量的細胞由于裂解液容易和細胞充分接觸,相對比較容易裂解充分。

7. 如果組織樣品本身非常細小,可以適當(dāng)剪切后直接加入裂解液裂解,通過強烈vortex使樣品裂解充分。然后同樣離心取上清,用于后續(xù)實驗。直接裂解的優(yōu)點是比較方便,不必使用勻漿器或研磨設(shè)備,缺點是不如使用勻漿器或研磨那樣裂解得比較充分。

8. 如果希望獲得更好的裂解效果,細菌和酵母可以分別使用溶菌酶和破壁酶消化,然后再使用本裂解液進行裂解。

9. 復(fù)融后的試劑請及時使用,避免裂解液中有效成分失效。

10. 本產(chǎn)品僅限于專業(yè)人員的科學(xué)研究用,不得用于臨床診斷或治療,不得用于食品或藥品,不得存放于普通住宅內(nèi)。

11.為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。


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