• 小鼠膽管類器官培養(yǎng)試劑盒(MA-0817H009HL/S)、基質(zhì)膠(082701/082703/082755)4℃化凍；

• 小鼠膽管類器官培養(yǎng)基的制備：將200μL Mouse Liver Ductal Organoid Supplement B (50x)，40μL Mouse Liver Ductal Organoid Supplement C (250x) 加至9.76mL Mouse Liver Ductal Organoid Basal Medium中，充分混合，配制成10mL小鼠膽管類器官培養(yǎng)基，室溫平衡，可在2-8°C儲存，建議在兩周內(nèi)使用；

• 準(zhǔn)備足量添加1%雙抗的DPBS；

• 配制10mL組織消化液，現(xiàn)配現(xiàn)用，37℃搖床混勻預(yù)熱，未用完消化液可-20℃保存1周（Mogengel：10mL基礎(chǔ)液+添加物500μL)。

小鼠斷脊處死，表面噴灑酒精殺菌，在無菌條件下將膽管第一大肝葉取出，用刀片切下1/2肝葉，放入4℃預(yù)冷的DPBS溶液中。

用冰冷的DPBS清洗2~3次，將組織轉(zhuǎn)移到新的6cm培養(yǎng)皿或1.5mL EP管中，用無菌組織剪將組織剪成約0.5mm3的碎片。

將剪碎的組織轉(zhuǎn)移到15mL離心管中，并加入約10mL冰冷的Basal medium。用5mL移液管上下吹打樣品，以去除紅血球和脂肪(它們會漂浮到溶液的頂部)。后讓組織碎片沉降5~7分鐘，并棄去約7.5mL的上清液，包括任何漂浮的脂肪， 后重復(fù)此洗滌步驟1~2次。

將剪碎的組織用適量的原代組織液消化液(MB-0818L06S-100)重懸，并轉(zhuǎn)移至新的離心管內(nèi)，于37℃，100rpm條件下的恒溫振蕩培養(yǎng)箱中，消化20-30分鐘，每隔10分鐘觀察組織消化情況，待組織塊明顯分散，懸液較渾濁時，取適量組織消化懸液鏡檢，待懸液中有較多膽管結(jié)構(gòu)即可終止消化，若組織碎塊較大或消化不可適當(dāng)延長消化時間。消化期間可以使用不同規(guī)格的移液器吹打組織消化懸液，幫助充分消化。 

在消化完成的組織懸液中加入胎牛血清（Fetal Bovine Serum, FBS）至終濃度達1%~5%以減緩消化作用，同時輕輕吹打5~10次。 

靜置3-10min，待組織碎片自然沉降后，將上清液轉(zhuǎn)移至新的15mL離心管中，剩余組織碎片中加入1mL冰冷的Basal medium吹打5~10次，靜置1min待組織碎片自然沉降后，將上清收集至離心管中。在8℃下以250g的速度離心3min，棄去上清以洗去殘留的消化液。若所獲細胞沉淀呈紅色，說明其中包含紅細胞，則需在清洗前于沉淀中加入紅細胞裂解液(MB-0818L08L/S)裂解紅細胞，并于250g離心力離心3分鐘，吸去上清液保留沉淀，再對沉淀進行清洗。

用含有抗生素的PBS或基礎(chǔ)培養(yǎng)基(MB-0818L07)清洗細胞2次（混勻后250g離心力離心，3分鐘，棄去上清液）以除去FBS。 

將清洗后的細胞沉淀用含有抗生素的PBS或基礎(chǔ)培養(yǎng)基重懸，取少量懸液進行活細胞檢測和計數(shù)，并按照100,000~500,000個細胞/mL的密度加入細胞外基質(zhì)（>70%）并在冰上混勻，混勻后置于冰上。

注意：混勻吹打的動作要輕柔，切忌產(chǎn)生大量氣泡，常溫混勻則需要控制在15秒內(nèi)。

用移液器吸取細胞外基質(zhì)和細胞的混合液移至細胞培養(yǎng)孔板中，（如24孔細胞培養(yǎng)板每孔點20~30μL混合懸液，48孔板每孔點12.5~18μL混合懸液，96孔板孔板每孔點3~5μL混合懸液），混合懸液須點至培養(yǎng)孔底部中央位置，其鋪開后不可接觸培養(yǎng)孔側(cè)壁。將培養(yǎng)板放入37℃，在5%CO2細胞培養(yǎng)箱中孵育20分鐘，待細胞外基質(zhì)凝固至不再流動后，沿孔壁緩緩加入培養(yǎng)基，(如24孔板加500μL培養(yǎng)基，48孔板加250μL培養(yǎng)基，96孔板加100μL培養(yǎng)基)，P0代培養(yǎng)3~4天換液。 

將細胞培養(yǎng)板放入培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)，每1天于倒置顯微鏡下觀察類器官的生長狀態(tài)，每3天于倒置顯微鏡下拍照，記錄多個視野中的類器官的形態(tài)和分布。