免疫組織化學(immunohistochemistry，IHC)是一種綜合定性、定位和定量；形態(tài)、機能和代謝密切結合為一體的研究和檢測技術。在原位檢測出病原的同時，還能觀察到組織病變與該病原的關系，確認受染細胞類型，從而有助于了解疾病的發(fā)病機理和病理過程。那么你知道免疫組化實驗常見問題有哪些嗎？讓我們一起來看看吧！

一、石蠟切片再染色過程出現(xiàn)脫片現(xiàn)象

1. 烤片時間不夠，或溫度不夠，可以延長烤片時間和提高烤片溫度；

2. 用含有多聚賴氨酸的玻片，可以購買到或這自己做；

3. 有些組織本身就容易掉片，如骨組織等，操作時沖PBS不要直接沖到組織上，沖到組織上方，讓它流下沖洗組織；

4. 用高溫修復時，溫度驟冷也可能引起。

二、邊緣效應

1. 組織邊緣與玻片粘貼不牢，邊緣組織松脫漂浮在液體中，每次清洗不易將組織下面試劑洗盡所致. 解決辦法：制備優(yōu)質的膠片（APES或多聚賴氨酸），切出盡量薄的組織切片，不厚于4微米，組織的前期處理應規(guī)范，盡量避免選用壞死較多的組織；

2. 切片上滴加的試劑未充分覆蓋組織，邊緣的試劑容易首先變干，濃度較中心組織高而致染色深。解決辦法：試劑要充分覆蓋組織，應超出組織邊緣2mm。用組化筆畫圈時，為了避免油劑的影響，畫圈應距組織邊緣3-4mm。

三、產(chǎn)生組織切片非特異性染色

1. 抗體孵育時間過長、抗體濃度高易增加背景著色。這可通過縮短一抗/二抗孵育時間、稀釋抗體來控制。這是最重要的一條；

2. 一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色，建議試用單克隆抗體看看；

3. 內(nèi)源性過氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高（含血細胞多的組織），需要通過延長滅活時間和增加滅活劑濃度來降低背景染色；

4. 非特異性組分與抗體結合，這需要通過延長二抗來源的動物免疫血清封閉時間和適當增加濃度來加強封閉效果；

5. DAB孵育時間過長或濃度過高；

6. PBS沖洗不充分，殘留抗體結果增強著色，在一抗、二抗或SP孵育之后的浸洗尤為重要；

7. 標本染色過程中經(jīng)常出現(xiàn)干片，這容易增強非特異性著色。

四、免疫組化染色呈陰性結果

1. 抗體濃度和質量問題以及抗體來源選擇錯誤；

2. 抗原修復不全，對于甲醛固定的組織必須用充分抗原修復來打開抗原表位，以利于與抗體結合；

3. 組織切片本身這種抗原含量低；

4. 血清封閉時間過長；

5. DAB孵育時間過短；

6. 細胞通透不全，抗體未能充分進入胞內(nèi)參與反應；

7. 開始做免疫組化，我建議你一定要首先做個陽性對照片，排除抗體等外的方法問題。

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