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周期型馬來絲蟲多基因克隆構(gòu)建載體轉(zhuǎn)染細胞

來源:威尼德生物科技(北京)有限公司   2025年01月24日 11:06  

摘要:本文詳細闡述了周期型馬來絲蟲多基因克隆構(gòu)建載體及轉(zhuǎn)染細胞的研究,通過RT-PCR技術(shù)擴增目標基因,構(gòu)建原核及真核表達載體,并轉(zhuǎn)染HeLa細胞進行表達分析。研究成功構(gòu)建了多基因轉(zhuǎn)化體系,為絲蟲病疫苗及抗蟲藥物的研發(fā)提供了基礎。

引言

馬來絲蟲(Brugia malayi)是一種寄生在人體淋巴系統(tǒng)中的絲蟲,可引起馬來絲蟲病。根據(jù)其微絲蚴出現(xiàn)于外周血液的時間,馬來絲蟲可分為夜現(xiàn)周期型和亞周期型。周期型馬來絲蟲成蟲寄生于人體四肢淺部淋巴系統(tǒng),特別是下肢,導致急性淋巴結(jié)炎、淋巴管炎及象皮腫等癥狀。馬來絲蟲病的防治主要依賴于藥物治療,然而,藥物的副作用及抗藥性的出現(xiàn)使得疫苗研發(fā)變得尤為重要。

熱休克蛋白70(HSP70)作為一種重要的免疫原,在多種寄生蟲中均有表達,并顯示出良好的免疫保護效果。此外,馬來絲蟲M29編碼基因也被認為是一種潛在的疫苗候選分子。因此,克隆和表達這些基因,構(gòu)建其轉(zhuǎn)化體系,對于開發(fā)抗絲蟲感染疫苗及藥物具有重要意義。

本研究旨在克隆周期型馬來絲蟲HSP70基因及M29編碼基因,構(gòu)建原核及真核表達載體,并轉(zhuǎn)染HeLa細胞進行表達分析,從而為絲蟲病疫苗及抗蟲藥物的研發(fā)提供基礎。通過多基因克隆及載體構(gòu)建,我們期望能夠篩選出高效表達的基因,進一步推進絲蟲病防治策略的發(fā)展。

材料與方法

1. 實驗材料

  • 蟲體材料:周期型馬來絲蟲成蟲,由南通大學醫(yī)學院寄生蟲學教研室提供。

  • 細胞系:HeLa細胞,購自ATCC細胞庫。

  • 載體:原核表達載體pGEX-4T-3,真核表達載體pcDNA3.1(+),由實驗室保存。

  • 試劑:某試劑RNA提取試劑盒、某試劑反轉(zhuǎn)錄試劑盒、某試劑PCR擴增試劑盒、某試劑DNA凝膠回收試劑盒、某試劑T4 DNA連接酶、某試劑質(zhì)粒提取試劑盒、某試劑限制性內(nèi)切酶、某試劑IPTG誘導劑、某試劑細胞培養(yǎng)基、某試劑轉(zhuǎn)染試劑。

  • 儀器:某品牌臺式高速離心機、某品牌紫外可見分光光度計、某品牌高壓滅菌器、某品牌凝膠成像系統(tǒng)、某品牌PCR儀、某品牌水平電泳槽、某品牌電泳儀、某品牌恒溫培養(yǎng)箱、某品牌電熱恒溫鼓風干燥箱、某品牌恒溫水浴箱、某品牌旋渦振蕩器、某品牌超凈工作臺、威尼德電穿孔儀。

2. 實驗方法

2.1 總RNA提取及反轉(zhuǎn)錄

  • 從周期型馬來絲蟲成蟲中提取總RNA,使用某試劑RNA提取試劑盒按照說明書操作。

  • 將提取的總RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,使用某試劑反轉(zhuǎn)錄試劑盒,按照說明書操作。

2.2 基因克隆及載體構(gòu)建

  • 根據(jù)GenBank上公布的周期型馬來絲蟲HSP70基因(登錄號:M68933)及M29編碼基因的序列,設計引物。

  • 使用某試劑PCR擴增試劑盒,以cDNA為模板擴增目的基因。

  • PCR產(chǎn)物經(jīng)某品牌凝膠成像系統(tǒng)檢測后,使用某試劑DNA凝膠回收試劑盒回收目的片段。

  • 將目的片段與原核表達載體pGEX-4T-3及真核表達載體pcDNA3.1(+)分別進行雙酶切,使用某試劑限制性內(nèi)切酶,按照說明書操作。

  • 使用某試劑T4 DNA連接酶將目的片段與載體連接,構(gòu)建重組質(zhì)粒。

  • 將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α中,涂布于含抗生素的LB平板上,37℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)過夜。

  • 挑取單克隆菌落,使用某試劑質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒,并進行雙酶切鑒定及測序驗證。

2.3 重組蛋白表達及鑒定

  • 將構(gòu)建成功的重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至大腸桿菌BL21(DE3)中,涂布于含抗生素的LB平板上,37℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)過夜。

  • 挑取單克隆菌落,接種于含抗生素的LB液體培養(yǎng)基中,37℃恒溫搖床培養(yǎng)至OD600達到0.6-0.8。

  • 加入IPTG誘導劑,37℃恒溫搖床繼續(xù)培養(yǎng)4小時。

  • 收集菌體,使用SDS-PAGE進行蛋白表達分析,使用某品牌凝膠成像系統(tǒng)檢測目的蛋白的表達情況。

2.4 細胞轉(zhuǎn)染及表達分析

  • 將HeLa細胞接種于6孔板中,培養(yǎng)至細胞密度達到70%-80%。

  • 使用某試劑轉(zhuǎn)染試劑,按照說明書操作,將構(gòu)建成功的真核表達載體轉(zhuǎn)染至HeLa細胞中。

  • 轉(zhuǎn)染后48小時,收集細胞,使用SDS-PAGE進行蛋白表達分析,使用某品牌凝膠成像系統(tǒng)檢測目的蛋白的表達情況。

實驗結(jié)果

1. 基因克隆及載體構(gòu)建

成功克隆了周期型馬來絲蟲HSP70基因及M29編碼基因,并構(gòu)建了原核表達載體pGEX-4T-3-HSP70、pGEX-4T-3-M29及真核表達載體pcDNA3.1(+)-HSP70、pcDNA3.1(+)-M29。雙酶切鑒定及測序驗證結(jié)果表明,構(gòu)建的重組質(zhì)粒符合預期大小,且序列正確。

2. 重組蛋白表達及鑒定

在大腸桿菌BL21(DE3)中成功表達了重組蛋白GST-HSP70及GST-M29,SDS-PAGE分析結(jié)果顯示,誘導組出現(xiàn)特異性蛋白表達條帶,與預計大小相符。目的蛋白占菌體總蛋白的10%-15%。

3. 細胞轉(zhuǎn)染及表達分析

成功將真核表達載體pcDNA3.1(+)-HSP70及pcDNA3.1(+)-M29轉(zhuǎn)染至HeLa細胞中,SDS-PAGE分析結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染組出現(xiàn)特異性蛋白表達條帶,與預計大小相符。目的蛋白在HeLa細胞中成功表達。

討論

本研究成功構(gòu)建了周期型馬來絲蟲HSP70基因及M29編碼基因的原核及真核表達載體,并實現(xiàn)了在大腸桿菌及HeLa細胞中的高效表達。這一研究為絲蟲病疫苗及抗蟲藥物的研發(fā)提供了基礎。

1. 基因克隆及載體構(gòu)建策略

在基因克隆及載體構(gòu)建過程中,我們選擇了常用的EcoRⅠ和NotⅠ限制性內(nèi)切酶進行雙酶切,以確保目的片段與載體的正確連接。同時,通過測序驗證確保了構(gòu)建的重組質(zhì)粒序列正確,為后續(xù)實驗提供了可靠的基礎。

2. 重組蛋白表達及鑒定

在大腸桿菌中表達重組蛋白時,我們選擇了IPTG誘導劑進行誘導表達,并通過SDS-PAGE分析鑒定了目的蛋白的表達情況。結(jié)果表明,構(gòu)建的重組質(zhì)粒能夠在大腸桿菌中穩(wěn)定表達目的蛋白,且表達量較高。這一結(jié)果為后續(xù)純化及功能研究提供了基礎。

3. 細胞轉(zhuǎn)染及表達分析

在細胞轉(zhuǎn)染實驗中,我們選擇了常用的某試劑轉(zhuǎn)染試劑進行轉(zhuǎn)染,并通過SDS-PAGE分析鑒定了目的蛋白在HeLa細胞中的表達情況。結(jié)果表明,構(gòu)建的真核表達載體能夠成功轉(zhuǎn)染至HeLa細胞中,并表達目的蛋白。這一結(jié)果為后續(xù)免疫學研究及疫苗研發(fā)提供了基礎。

4. 研究的創(chuàng)新與應用前景

本研究的創(chuàng)新之處在于成功構(gòu)建了周期型馬來絲蟲多基因克隆轉(zhuǎn)化體系,并實現(xiàn)了在大腸桿菌及HeLa細胞中的高效表達。這一研究為絲蟲病疫苗及抗蟲藥物的研發(fā)提供了新的思路和方法。未來,我們將進一步開展免疫學研究,評估目的蛋白的免疫保護效果,為絲蟲病防治策略的發(fā)展提供科學依據(jù)。


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