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實(shí)驗(yàn)操作 | 破骨細(xì)胞的體外誘導(dǎo)! 攻略來(lái)咯~

來(lái)源:MedChemExpress LLC   2025年07月30日 09:16  

 細(xì)胞有幾個(gè)核???
 
 并非所有細(xì)胞都只有1個(gè)細(xì)胞核喔~
 
 破骨細(xì)胞:高度分化的多核細(xì)胞,無(wú)克隆能力,無(wú)法傳代培養(yǎng),且破骨細(xì)胞體外培養(yǎng)較為困難......

 

Section.01

骨代謝: 背景知識(shí)

 

老樣子,在開(kāi)始本期內(nèi)容前,先來(lái)點(diǎn)背景知識(shí)做“開(kāi)胃小菜”! 當(dāng)然,做骨骼相關(guān)研究的小伙伴兒們可自行略過(guò)~

首先,我們來(lái)了解下有關(guān)骨代謝的專業(yè)術(shù)語(yǔ)!

骨重塑

骨重塑:指的是破骨細(xì)胞清除舊骨或受損骨質(zhì),并由成骨細(xì)胞形成的新骨取代的過(guò)程。

骨骼,是一種動(dòng)態(tài)組織。其在人的整個(gè)生命過(guò)程中是不斷被重塑的。持續(xù)重塑是維持骨骼關(guān)鍵功能所必需的,它能防止骨損傷的積累,并維持骨骼的機(jī)械強(qiáng)度和鈣穩(wěn)態(tài)[1]

骨重塑過(guò)程由破骨細(xì)胞和成骨細(xì)胞的“交流”來(lái)調(diào)控完成[2]。

  • 破骨細(xì)胞 (osteoclasts,OCs):是一種骨吸收細(xì)胞,源自造血干細(xì)胞,它通過(guò)分泌酸性酶和蛋白水解酶來(lái)降解骨質(zhì)

  • 成骨細(xì)胞 (Osteoblasts,OBs):是一種骨形成細(xì)胞,它由間充質(zhì)前體細(xì)胞在轉(zhuǎn)錄因子的連續(xù)作用下分化為骨祖細(xì)胞譜系而產(chǎn)生,并最終分化為骨細(xì)胞。

 

 

圖 1. 破骨細(xì)胞生成和成骨細(xì)胞生成的策略[1]。

骨礦化

骨礦化:指的就是鈣的沉淀過(guò)程。鈣、磷等無(wú)機(jī)鹽沉淀在骨頭組織的過(guò)程,就叫骨的礦化。

簡(jiǎn)單說(shuō),礦化是進(jìn)化過(guò)程中的一種被動(dòng)選擇。

生物礦化的起源可以追溯到前寒武紀(jì)晚期,當(dāng)時(shí)構(gòu)造活動(dòng)導(dǎo)致海水中可溶性礦物顯著增加。人們普遍認(rèn)為,海洋生物首先發(fā)展出由碳酸鈣和/或磷酸鈣礦物組成的原始外骨骼,漸漸地,骨骼組織被內(nèi)化。礦化骨骼強(qiáng)大的承重能力使得大型脊椎動(dòng)物得以進(jìn)化[3]

作為一種特殊的結(jié)締組織,骨骼具有高度礦化的結(jié)構(gòu)和構(gòu)造。一方面,作為內(nèi)部支撐系統(tǒng),骨骼可為身體提供結(jié)構(gòu)基礎(chǔ),并為運(yùn)動(dòng)提供肌肉附著點(diǎn)。同時(shí),骨骼還保護(hù)大腦和內(nèi)臟器官,并為骨髓造血組織提供場(chǎng)所。此外,骨骼也是無(wú)機(jī)離子 (尤其是磷酸鹽和鈣) 的主要來(lái)源和儲(chǔ)存地,它們能夠積極參與體內(nèi)礦物質(zhì)穩(wěn)態(tài)和能量代謝[4]

骨吸收

骨吸收:指的是骨鈣溶出的過(guò)程。也就是把鈣從骨頭里面“搬”出來(lái)。破骨細(xì)胞將硬骨組織分解為礦物質(zhì),同時(shí)將骨骼中的鈣釋放至血液中。

破骨細(xì)胞是僅有的明確可降解骨的細(xì)胞,在骨穩(wěn)態(tài)和健康維持中至關(guān)重要。

破骨細(xì)胞是一種組織特異性的多核巨噬細(xì)胞,由血液及骨髓中的單核/巨噬細(xì)胞系分化而來(lái) (圖 2)。其分化過(guò)程經(jīng)歷破骨細(xì)胞前體 (osteoclast precursor cells,OPCs,或稱 preosteoclasts)、融合的多核破骨細(xì)胞 (non-functional polykaryons)、成熟破骨細(xì)胞 (mature osteoclasts,也稱極化的多核破骨細(xì)胞) 等幾個(gè)階段。

 

               

圖 2. 破骨細(xì)胞分化過(guò)程圖[5]。

下面顯示了阻斷破骨細(xì)胞生成和活化的單基因突變。斜體字表示在嚙齒動(dòng)物和人類中自然發(fā)生的突變,而其他則是通過(guò)靶向誘變產(chǎn)生無(wú)效等位基因的結(jié)果。上面顯示的是增加破骨細(xì)胞生成和/或活化及存活并導(dǎo)致骨質(zhì)疏松癥的單基因突變等位基因。請(qǐng)注意,除了 OPG22 和 sRANKL77 轉(zhuǎn)基因小鼠過(guò)表達(dá)模型(藍(lán)色邊框)外,所有這些突變均為無(wú)效突變。

 

如圖 2 所示,M-CSF(CSF-1)和 RANKL 對(duì)破骨細(xì)胞生成至關(guān)重要,二者缺一不可。OPG 可以結(jié)合并中和 RANKL,從而負(fù)向調(diào)節(jié)破骨細(xì)胞生成和成熟破骨細(xì)胞的活化。

 

RANKL:核因子 κB 受體活化因子配體 (Receptor Activator for Nuclear Factor-κBLigand,RANKL) 被認(rèn)為是促進(jìn)破骨細(xì)胞最為分化成熟及其功能活性最重要的因子,由成骨細(xì)胞/間充質(zhì)干細(xì)胞分泌,結(jié)合破骨細(xì)胞前體膜上的 RANK 受體,激活下游 NF-κB、MAPK、NFATc1 通路。

M-CSF:巨噬細(xì)胞集落刺激因子,可誘導(dǎo) RANK 在破骨細(xì)胞前體的細(xì)胞膜上表達(dá),進(jìn)而使表達(dá) RANK 的破骨前體細(xì)胞和 RANKL 結(jié)合并產(chǎn)生效應(yīng),誘導(dǎo)破骨細(xì)胞分化。

上下滑動(dòng)查看更多

 

目前,已有大量實(shí)驗(yàn)證實(shí)破骨細(xì)胞形成和功能失調(diào)與骨質(zhì)疏松癥、骨折愈合、骨關(guān)節(jié)炎和原發(fā)性/轉(zhuǎn)移性骨腫瘤等密切相關(guān)[2]。體外誘導(dǎo)破骨細(xì)胞分化對(duì)研究骨代謝疾病、藥物篩選具有重要作用。

 

 

 

Section.02

破骨細(xì)胞的體外誘導(dǎo)

 

目前破骨細(xì)胞主要采用的是骨髓單核細(xì)胞誘導(dǎo)法 (bone marrow monocytes,BMMs) 和 RAW264.7 細(xì)胞系誘導(dǎo)法兩種方法。

方案一、小鼠骨髓單核細(xì)胞誘導(dǎo)破骨細(xì)胞

實(shí)驗(yàn)方案

1. 骨髓細(xì)胞提取

(1) 取 6-8 周齡小鼠,使用 CO2 吸入致死。用 75% 酒精消毒小鼠毛皮。

(2) 取雙側(cè)股骨、脛骨,用無(wú)菌注射器吸取無(wú)菌 PBS 沖洗骨髓腔 3 次,收集液體于 15 mL 離心管中,300×g 4℃ 離心 5 min,棄上清。

(注:避免用力過(guò)猛導(dǎo)致細(xì)胞機(jī)械損傷)

(3) 過(guò) 70 -100 μm 細(xì)胞篩,1500 rpm 離心 5 min。室溫下紅細(xì)胞裂解液 處理 5 min,PBS 洗滌 2 次。

圖 3. 骨髓細(xì)胞提取示意圖[6]

 

2. BMMs 貼壁篩選

(1) 用 5 mL 含 10% FBS  的 α-MEM 培養(yǎng)基重懸,離心,棄上清。

(2) 用 5 mL 含 M-CSF (25 ng/mL) 和 10% FBS 的 α-MEM 培養(yǎng)基重懸細(xì)胞。接種于 6 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中 (每只小鼠一孔),置于 37°C、5% CO2 細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過(guò)夜。

(3) 收集上清離心,棄上清液 (主要為紅細(xì)胞和粒細(xì)胞),用 5 mL 含有 50 ng/mL M-CSF 的培養(yǎng)基重懸后,以 5×104 cells/孔的密度接種于 24 孔板中 (每孔 1 mL),2-3 天后貼壁細(xì)胞即為骨髓來(lái)源巨噬細(xì)胞;

3. 破骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化

(1) 棄上清液,用無(wú)菌 PBS 清洗 2 次。使用含有 50 ng/mL M-CSF 和 50 ng/mL RANKL 的培養(yǎng)基進(jìn)行誘導(dǎo)分化;

(2) 細(xì)胞每 3 天換一次液,并補(bǔ)加因子 25 ng/mL M-CSF 和 50 ng/mL RANKL,4-6 天后進(jìn)行誘導(dǎo)鑒定。

不同孔板建議加入的細(xì)胞數(shù)和培養(yǎng)液體積

 

MCE 客戶驗(yàn)證

 

圖 4.兩種多發(fā)性骨髓瘤細(xì)胞條件培養(yǎng)基 和 M-CSF (HY-P7085, 20 ng/L) 誘導(dǎo)正常小鼠原代巨噬細(xì)胞破骨形成[7]

用 MM 細(xì)胞、CM 和 M-CSF (20 ng/L) 處理原代小鼠巨噬細(xì)胞,然后進(jìn)行 TRAP 染色。含有三個(gè)以上細(xì)胞核且 TRAP 呈陽(yáng)性的細(xì)胞被視為破骨細(xì)胞。

方案二、巨噬細(xì)胞系 RAW264.7 誘導(dǎo)破骨細(xì)胞

實(shí)驗(yàn)方案

(1) 用含 10% FBS 的 α-MEM 培養(yǎng)基將 RAW264.7 細(xì)胞制成細(xì)胞懸液,以 3×104 cells/孔的密度接種于 24 孔板中。

(2) 細(xì)胞接種 12 h 后,加入 RANKL (20-100 ng/mL)。每 3 天更換培養(yǎng)基,并同時(shí)補(bǔ)加 RANKL (20-100 ng/mL)。

(3) 較為明顯的多核破骨細(xì)胞將在分化培養(yǎng) 4 天后開(kāi)始出現(xiàn),并在第 5 天至第 6 天逐漸變得豐富。

RAW 264.7 細(xì)胞表達(dá) M-CSF 及其受體 c-fms。因此,僅加入 RANKL 就足以誘導(dǎo)破骨細(xì)胞分化,無(wú)需額外加入 M-CSF。

 

MCE 客戶驗(yàn)證

 

圖 5. RANKL (HY-P7425, 35 ng/mL) 誘導(dǎo) 5 天后,Raw 264.7 發(fā)生破骨細(xì)胞分化[8]。

TRAP 染色視野和定量分析結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,RANKL 處理導(dǎo)致 Raw 264.7 多核破骨細(xì)胞數(shù)量顯著增加 (p < 0.01)。

 

 

 

Section.03

破骨細(xì)胞,如何鑒定?

 

一、形態(tài)學(xué)鑒定

1. 多核巨細(xì)胞

相差顯微鏡下可見(jiàn) ≥3 個(gè)細(xì)胞核 (成熟破骨細(xì)胞通常含 10–20 個(gè)核)

2. 偽足結(jié)構(gòu)

活化破骨細(xì)胞邊緣呈“皺褶緣” (ruffled border),為骨吸收功能區(qū)域。鬼筆環(huán)肽染色后共聚焦顯微鏡觀察 (特征性"封箱帶"結(jié)構(gòu))

 

圖 6.鬼筆環(huán)肽對(duì)破骨細(xì)胞中的足狀體肌動(dòng)蛋白帶進(jìn)行染色[9]。 

M-CSF (30 ng/mL) 和 RANKL (100 ng/mL) 誘導(dǎo) BMMs 破骨分化。當(dāng)破骨細(xì)胞出現(xiàn)時(shí),用 PBS 輕輕沖洗,用 0.1% Triton X-100 滲透 30 min,最后用羅丹明偶聯(lián)的 Phalloidin 染色,檢測(cè)細(xì)胞骨架肌動(dòng)蛋白結(jié)構(gòu)的形成,同時(shí)細(xì)胞核用 DAPI 復(fù)染。

 

二、功能標(biāo)志物檢測(cè)

1. Trap 染色

破骨細(xì)胞產(chǎn)生許多酶,其中主要是抗酒石酸酸性磷酸酶 (tartrate-resistant acidic phosphatase, Trap),Trap 特異地分布于破骨細(xì)胞中,通常作為鑒別破骨細(xì)胞的重要標(biāo)志物。

【實(shí)操步驟】

  • 細(xì)胞樣本 (以 48 孔板為例)

(1) 移除細(xì)胞培養(yǎng)液,每孔加入 400 μL PBS 清洗,棄液。

(2) 每孔加入 300 μL 4% 多聚甲醛溶液,室溫固定 15-30 min,棄液。

(3) 每孔加入 300 μL PBS,清洗 2 次。

(4) 染色:每孔加入 150-200 μL TRAP 染色液,37℃ 避光孵育 10-15 min (待測(cè)樣品中酒石酸酸性磷酸酶活性較低時(shí),可適當(dāng)延長(zhǎng)孵育時(shí)間至 30 分鐘或顯微鏡下顯色至預(yù)期深淺)

(5) 每孔加入 300 μL PBS,清洗 2 次。

(6) 顯微鏡下觀察和拍照。

2. 骨吸收實(shí)驗(yàn)

骨髓單核細(xì)胞 (BMMs) 接種于羥基磷灰石涂層板或骨片,觀察吸收陷窩的情況。

例如,為了檢測(cè)體外破骨細(xì)胞骨吸收功能的影響,將 BMMs 接種于磷酸鈣涂層仿骨骨分析 Stripwell 板。培養(yǎng)期間,每天補(bǔ)充一次含有 M-CSF、RANKL 的新鮮培養(yǎng)基。10 天后,用超聲波去除骨片表面細(xì)胞,用 SEM (掃描電子顯微鏡) 對(duì)吸收凹陷進(jìn)行成像,并使用 I mageJ 軟件對(duì)凹陷面積進(jìn)行量化。用茜素紅染色液對(duì)磷酸鈣涂層仿骨骨分析 Stripwell 板進(jìn)行染色,并使用共聚焦激光顯微鏡進(jìn)行拍照,三維重建,觀察骨片中的凹坑[5]。

 

圖 7. 高鋅環(huán)境下的老年骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞 (BMSCs) 外泌體能夠抑制破骨細(xì)胞分化和骨質(zhì)破壞[9]。

(A-B) 不同同牛骨切片上骨吸收凹坑及其吸收區(qū)域的代表性掃描電子顯微鏡圖像和(C)切片上 3D 重建的共聚焦顯微鏡觀察。(Con:正常的 BMMs 破骨誘導(dǎo)組; Aged-EXO:不含鋅的老化外泌體處理組; Aged + Zn2+-EXO:添加鋅的老化外泌體處理組)

 

三、分子標(biāo)志物檢測(cè)

qPCR/WB 檢測(cè) Trap、NFATc1CTSK (組織蛋白酶 K)、DC-STAMP (細(xì)胞融合相關(guān)蛋白)

qPCR/WB 技術(shù)實(shí)操不在贅述,需要的小伙伴可參考往期推文:從基礎(chǔ)到進(jìn)階:PCR、qPCR 和 RT-PCR 不是一回事兒?(內(nèi)含 Protocol);干貨分享 | WB 常見(jiàn)問(wèn)題及解決方案 

實(shí)驗(yàn)小提示

(1) RAW264.7 細(xì)胞在含有 10% FBS 的 RPMI-1640 或 DEME 培養(yǎng)基中可以增殖并保持其分化為破骨細(xì)胞的能力,而其在含有 10% FBS 的 α-MEM 中培養(yǎng)可進(jìn)行破骨細(xì)胞分化試驗(yàn)。

(2) RAW264.7 分化為破骨細(xì)胞的成功與否與細(xì)胞狀態(tài)密切相關(guān),建議使用 15 代以內(nèi)的 RAW264.7 細(xì)胞。

(3) 分化誘導(dǎo)培養(yǎng)基工作液建議現(xiàn)配現(xiàn)用,使用前注意 37 ℃ 溫育。

(4) 使用的 RANKL 和 M-CSF 濃度可能因小鼠和實(shí)驗(yàn)室條件而異。

(5) 破骨細(xì)胞形成初期,細(xì)胞呈紡錘形,成熟后,細(xì)胞變大,多核,呈圓形。從 RANKL 和 M-CSF 添加后的第 4 天起,每天至少觀察一次細(xì)胞,因?yàn)樾∈笃乒羌?xì)胞在分化后非常不穩(wěn)定。

(6) 誘導(dǎo)成功后立即進(jìn)行染色,小鼠破骨細(xì)胞在成熟后 24 h 內(nèi)死亡。

 

產(chǎn)品推薦

RANKL/TNFSF11 Protein, Mouse (HY-P7425)

RANKL 是 RANK 的激活劑。當(dāng)與 RANK 結(jié)合后,其誘導(dǎo)單核細(xì)胞/巨噬細(xì)胞譜系細(xì)胞分化為破骨細(xì)胞,并進(jìn)一步導(dǎo)致破骨細(xì)胞前體成熟。

M-CSF Protein, Mouse (HY-P7085)

M-CSF 是調(diào)節(jié)造血前體細(xì)胞(特別是單核吞噬細(xì)胞,包括巨噬細(xì)胞和單核細(xì)胞)存活、增殖和分化的關(guān)鍵協(xié)調(diào)因子。

TNFRSF11B/OPG Protein, Mouse (HEK293, His) (HY-P71017)

競(jìng)爭(zhēng)性抑制 RANKL-RANK 結(jié)合,負(fù)調(diào)控破骨細(xì)胞生成。

Red Blood Cell Lysis Buffer (HY-3010)

即用型溶液,能快速、有效的從人或鼠等的血液或組織樣品中裂解并去除無(wú)核紅細(xì)胞,不影響白細(xì)胞、正常組織或腫瘤細(xì)胞。

DMEM (High Glucose, L-Glutamine, Pyruvate, Phenol Red, no HEPES) (HY-K3001)

廣泛使用的基礎(chǔ)培養(yǎng)基。

Rhodamine Phalloidin (HY-K0903)

羅丹明偶聯(lián)的 Phalloidin,檢測(cè)細(xì)胞骨架肌動(dòng)蛋白結(jié)構(gòu)的形成。

TRAP Antibody (YA2321) (HY-P82576)

適用于 Human, Mouse, Rat 的 WB, IHC-P, ICC/IF, IP。

NFAT2 Antibody (HY-P80243)

適用于 Human 的 WB, IHC-P, FC。

 

[1] Kim JM, et al. Osteoblast-Osteoclast Communication and Bone Homeostasis. Cells. 2020 Sep 10;9(9):2073. 

[2] DONG Shiwu, et al. Break and then stand: novel insight into osteoclast functions in the skeletal system[J]. Journal of Army Medical University, 2022, 44(1): 79-88. 

[3] Murshed M. Mechanism of Bone Mineralization. Cold Spring Harb Perspect Med. 2018 Dec 3;8(12):a031229. Erratum in: Cold Spring Harb Perspect Med. 2020 Aug 3;10(8):a040667. 

[4] Shi C,et al. Recent advances in bone-targeted therapy. Pharmacol Ther. 2020 Mar;207:107473. 

[5] Boyle WJ, et al. Osteoclast differentiation and activation. Nature. 2003 May 15;423(6937):337-42. 

[6] Toda G, et al. Preparation and culture of bone marrow-derived macrophages from mice for functional analysis. STAR Protoc. 2020 Dec 31;2(1):100246. 

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[8] Wen L, et al. TFAP2B governs the regulation of SIRT1 to inhibit osteoclast-induced bone destruction. Biochem Biophys Res Commun. 2025 Mar 8;752:151410.

[9] Yin S, et al. Dominoes with interlocking consequences triggered by zinc: involvement of microelement-stimulated MSC-derived exosomes in senile osteogenesis and osteoclast dialogue. J Nanobiotechnology. 2023 Sep 23;21(1):346.


 


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