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從納米尺度解析神經(jīng)環(huán)路,單分子定位技術(shù)在突觸生物學(xué)中的創(chuàng)新應(yīng)用

來(lái)源:QUANTUM量子科學(xué)儀器貿(mào)易(北京)有限公司   2025年08月05日 09:40  

大腦具有驚人的分子多樣性,這種多樣性不僅是神經(jīng)元復(fù)雜結(jié)構(gòu)特化的基礎(chǔ),也支撐著神經(jīng)元間復(fù)雜的連接與突觸傳遞。要理解這些分子的功能,關(guān)鍵在于解析眾多蛋白的精確定位及其空間關(guān)系。然而,神經(jīng)元精細(xì)結(jié)構(gòu)內(nèi)組分高度密集,傳統(tǒng)光學(xué)顯微鏡約200 nm的衍射極限阻礙了此類信息的獲取。

 

超分辨率成像技術(shù)突破了200 nm的傳統(tǒng)光學(xué)衍射極限,單分子定位技術(shù)(SMLM)具有20 nm的超高空間分辨率,是研究單個(gè)分子定位、蛋白相互作用等的理想工具,可以實(shí)現(xiàn)大分子復(fù)合物的原位可視化。該技術(shù)可應(yīng)用于諸如突觸活動(dòng)區(qū)的分子組織,生長(zhǎng)錐和樹(shù)突棘中肌動(dòng)蛋白的排列與膜運(yùn)輸機(jī)制,單分子水平的突觸傳遞與可塑性,腦回路的納米級(jí)結(jié)構(gòu)和軸突質(zhì)膜下肌動(dòng)蛋白和血影蛋白細(xì)胞骨架的顯著周期性等不同研究中。

 

Abbelight 3D單分子超分辨成像系統(tǒng)依托前沿的單分子定位顯微成像技術(shù)(SMLM),實(shí)現(xiàn)xyz三軸15 nm的超高分辨率,支持同時(shí)多色成像;該系統(tǒng)支持 STORM、PALM、PAINT 等單分子定位技術(shù),并融入ASTER大視野成像、光譜拆分多色成像Ultimate 3D成像技術(shù),構(gòu)建了一個(gè)強(qiáng)大易用的一體化平臺(tái),助力神經(jīng)科學(xué)家準(zhǔn)確解析神經(jīng)元細(xì)胞結(jié)構(gòu)與功能的納米級(jí)分子機(jī)制。

 

3D單分子超分辨成像系統(tǒng)

 

本文將從納米級(jí)突觸表型檢測(cè)、膜相關(guān)周期性骨架和軸突起始段的結(jié)構(gòu)組成三方面應(yīng)用入手,介紹Abbelight 3D單分子超分辨成像系統(tǒng)在神經(jīng)科學(xué)領(lǐng)域的應(yīng)用。

 

 

 

納米級(jí)突觸表型檢測(cè)

 

 

圖1   突觸的多通道成像

橙色:囊泡GABA轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白;藍(lán)色:Bassoon管蛋白

 

不同突觸間神經(jīng)遞質(zhì)釋放的過(guò)程存在顯著差異,為探究這種差異是否與釋放過(guò)程中蛋白質(zhì)的組織結(jié)構(gòu)有關(guān),J. Burrone 等[1] 利用Abbelight 3D單分子超分辨成像系統(tǒng),通過(guò)多色單分子定位技術(shù)對(duì)SypHy-RGECO(一種能同步檢測(cè)突觸前鈣離子內(nèi)流與神經(jīng)遞質(zhì)釋放的雙重報(bào)告蛋白)進(jìn)行成像,旨在研究單個(gè)突觸前小體的結(jié)構(gòu)-功能關(guān)系。

 

通過(guò) Cav2.1 和巴松管蛋白(Bassoon)與 SypHy-RGECO的雙色 dSTORM 超分辨成像,研究者發(fā)現(xiàn)這兩種活性區(qū)蛋白均以亞突觸結(jié)構(gòu)域(SSDs)的形式存在。在代表單個(gè)突觸前小體的 SypHy-RGECO 團(tuán)簇內(nèi),可包含 1 至 6 個(gè) Cav2.1   SSD(均值=1.6,圖 2A)或 Bassoon SSDs(均值=1.7,圖 2B)。利用基于單分子檢測(cè)密度的分析軟件 Point Cloud Analyst 分析表明:含多個(gè)Cav2.1 SSDs的突觸,其SypHy 團(tuán)簇體積更大(圖 2C);含多個(gè)Bassoon SSDs的突觸,其SypHy 團(tuán)簇體積差異更為顯著(圖 2D)。

 

這些結(jié)果表明,突觸可通過(guò)不同方式組織蛋白:既可形成單個(gè)SSD,也可構(gòu)建具有不同密度的多個(gè)SSD。此類精細(xì)結(jié)構(gòu)在傳統(tǒng)光學(xué)顯微鏡下無(wú)法觀測(cè),凸顯了單分子定位技術(shù)在揭示突觸蛋白組織機(jī)制方面難以超越的優(yōu)勢(shì),而 Abbelight 3D 單分子超分辨成像系統(tǒng)憑借其超高分辨率,為觀測(cè)此類精細(xì)結(jié)構(gòu)提供了有力支撐。

 

 

圖2   SypHy-RGECO團(tuán)簇內(nèi)的Cav2.1和Bassoon

 

J. Burrone等之后的一項(xiàng)研究[2]表明,海馬CA1區(qū)基底樹(shù)突在起層(stratum oriens)形成的突觸中,約半數(shù)屬于多突觸小泡(MSB)—— 即單個(gè)突觸前小泡與來(lái)自不同細(xì)胞的多個(gè)(2-7個(gè))突觸后棘形成興奮性連接。這類突觸數(shù)量龐大且具有特殊形態(tài),此外單個(gè)MSB內(nèi)部各突觸接觸點(diǎn)的特性差異,遠(yuǎn)小于相鄰單突觸小泡(SSB)之間的異質(zhì)性,這表明MSB通過(guò)其眾多接觸點(diǎn)傳遞相似的信息,暗示它們可能在促進(jìn)神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)同步化活動(dòng)中發(fā)揮作用。

 

研究人員使用STORM技術(shù)對(duì)標(biāo)記了兩種突觸前分子 —— vGlut-1和Bassoon進(jìn)行成像,分析多個(gè)樣本中MSB的分布情況(圖3)。結(jié)果顯示,vGlut-1呈現(xiàn)出突觸終端前小泡輪廓,而B(niǎo)assoon染色則如預(yù)期呈現(xiàn)更明顯的點(diǎn)狀分布(圖3A、3B)。通過(guò)Abbelight Neo軟件的團(tuán)簇分析功能發(fā)現(xiàn),相較于SSB,MSB的vGlut團(tuán)簇具有更大的體積(圖3C),但Bassoon團(tuán)簇體積無(wú)顯著變化(圖3D)。更重要的是,MSB內(nèi)部的Bassoon團(tuán)簇體積離散度顯著低于不同SSB間的離散度(圖3E),這與MSBs活性區(qū)尺寸變異減小的測(cè)量結(jié)果一致。這些數(shù)據(jù)共同表明,MSBs通過(guò)各接觸點(diǎn)向多個(gè)細(xì)胞傳遞相似的信息,而 Abbelight 3D 單分子超分辨成像系統(tǒng)的精準(zhǔn)成像和配套分析軟件的強(qiáng)大功能,為該研究結(jié)論的得出提供了可靠依據(jù)。

 

 

圖3   多突觸小泡內(nèi)部活性區(qū)的特性相似度顯著高于單突觸小泡

 

J. Burrone等的另一項(xiàng)研究[3]發(fā)現(xiàn),在發(fā)育中的海馬CA1神經(jīng)元基底樹(shù)突上,興奮性和抑制性突觸的分布呈現(xiàn)高度相關(guān)性。這種緊密關(guān)聯(lián)在神經(jīng)元發(fā)育早期(P7階段)最為顯著——此時(shí)抑制性突觸在分子和生理功能上均未成熟,而隨著興奮性突觸密度的增加,兩者的相關(guān)性會(huì)逐漸減弱。

 

研究人員發(fā)現(xiàn),P7階段神經(jīng)遞質(zhì)釋放失敗率相較于更成熟的P21階段更高。為深入探究這一現(xiàn)象,研究人員使用dSTORM對(duì)vGAT標(biāo)記的突觸前小泡進(jìn)行超分辨率成像(圖4A),發(fā)現(xiàn)vGAT點(diǎn)狀團(tuán)簇結(jié)構(gòu)的體積在各階段均無(wú)顯著差異(圖4B),證實(shí)抑制性突觸在發(fā)育過(guò)程中未發(fā)生明顯變化。接下來(lái)對(duì)普遍存在于所有突觸小泡的活性區(qū)標(biāo)志物Bassoon進(jìn)行成像(圖4C)并用Abbelight Neo軟件進(jìn)行共定位分析,發(fā)現(xiàn)在P7階段僅有約40%的內(nèi)源性vGAT(白色)點(diǎn)狀團(tuán)簇含有Bassoon(紅色)(圖4C行2)或另一關(guān)鍵活性區(qū)蛋白R(shí)IM1/2(紅色)(圖4C行3)。到P10階段時(shí),絕大多數(shù)(約90%)vGAT陽(yáng)性突觸已能清晰標(biāo)記這兩種活性區(qū)標(biāo)志物,且這種共定位在P21階段仍保持高度穩(wěn)定(圖4C)。以上結(jié)果表明,在P7階段,基底樹(shù)突上的大多數(shù)抑制性突觸尚未成熟,其活性區(qū)未完全形成。Abbelight   3D 單分子超分辨成像系統(tǒng)的高分辨率成像能力和精準(zhǔn)的共定位分析功能,使得這種突觸發(fā)育過(guò)程中的細(xì)微變化得以清晰呈現(xiàn)。

 

圖4   抑制性突觸早期發(fā)育時(shí)的組成變化

 

 

 

膜相關(guān)周期性骨架

 

C. Leterrier等[4]通過(guò)多種單分子定位超分辨顯微技術(shù),借助神經(jīng)元培養(yǎng)體系中經(jīng)驗(yàn)證的微珠誘導(dǎo)突觸前膜模型,實(shí)現(xiàn)了對(duì)突觸前肌動(dòng)蛋白的納米級(jí)結(jié)構(gòu)解析和定量檢測(cè),發(fā)現(xiàn)了一類主要的肌動(dòng)蛋白富集型突觸前膜,存在三種特征性的肌動(dòng)蛋白結(jié)構(gòu):活躍區(qū)域的肌動(dòng)蛋白網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)(actin mesh)、連接活躍區(qū)與深層儲(chǔ)備池的肌動(dòng)蛋白軌道狀結(jié)構(gòu)(actin   rails),以及環(huán)繞整個(gè)突觸前區(qū)的肌動(dòng)蛋白圍欄狀結(jié)構(gòu)(actin corrals)。這類突觸不僅聚集了更多突觸前組分,其突觸小泡循環(huán)速率也顯著高于非富集型突觸。

 

為精確解析肌動(dòng)蛋白與突觸前組分的空間關(guān)系,研究人員采用了三色STORM/PAINT聯(lián)用成像技術(shù):先通過(guò)STORM對(duì)肌動(dòng)蛋白成像,再運(yùn)用雙色DNA-PAINT技術(shù)分別標(biāo)記沿軸突干形成環(huán)狀結(jié)構(gòu)的血影蛋白β2-spectrin和勾勒突觸小泡群的突觸素synapsin。結(jié)果證實(shí)血影蛋白膜下支架終止于突觸小泡處,而肌動(dòng)蛋白圍欄結(jié)構(gòu)包裹著突觸小泡團(tuán)簇,其軌道狀結(jié)構(gòu)指向活性區(qū)(圖5A)。通過(guò)STORM納米成像比較肌動(dòng)蛋白富集型(A+)與非富集型(A-)誘導(dǎo)突觸前膜的差異顯示,A+與A-型誘導(dǎo)突觸前膜均含有三種肌動(dòng)蛋白納米結(jié)構(gòu)(網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)、軌道狀結(jié)構(gòu)和圍欄狀結(jié)構(gòu))(圖5B)。進(jìn)一步檢測(cè)包被微珠誘導(dǎo)的興奮性與抑制性突觸前膜是否均存在這三類肌動(dòng)蛋白納米結(jié)構(gòu),通過(guò)抗VGLUT與VGAT抗體標(biāo)記發(fā)現(xiàn),兩類誘導(dǎo)突觸前膜的肌動(dòng)蛋白納米結(jié)構(gòu)無(wú)定性差異,絕大多數(shù)都含有網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)、軌道狀結(jié)構(gòu)和圍欄狀結(jié)構(gòu)(圖5E-F)。Abbelight 3D 單分子超分辨成像系統(tǒng)支持多種成像模式,能夠精準(zhǔn)解析復(fù)雜的分子空間關(guān)系,為研究膜相關(guān)周期性骨架提供了強(qiáng)大的技術(shù)支持。

 

 

圖5   各類誘導(dǎo)型突觸前膜中均存在肌動(dòng)蛋白網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)、軌道狀結(jié)構(gòu)與圍欄狀結(jié)構(gòu)。

 

 

 

軸突起始段的結(jié)構(gòu)組成

 

在哺乳動(dòng)物的軸突性樹(shù)突(AcD)神經(jīng)元中,軸突并非起源于胞體,而是從基底樹(shù)突發(fā)出,進(jìn)而在軸突起始段(AIS)形成動(dòng)作電位產(chǎn)生的特化通路。然而目前尚不明確這種特殊形態(tài)是如何建立的,以及AcD神經(jīng)元中AIS的結(jié)構(gòu)與功能是否得以保留。

 

K. Grünewald等[5]采用離體海馬神經(jīng)元培養(yǎng)模型,發(fā)現(xiàn)AcD形態(tài)的發(fā)育可發(fā)生在突觸形成之前,且不依賴于體內(nèi)環(huán)境。單個(gè)前體神經(jīng)突首先形成軸突,隨后發(fā)育為AcD。該AIS具有與胞體源AIS相似的細(xì)胞骨架結(jié)構(gòu),同樣作為運(yùn)輸屏障維持軸突特異性分子組成。然而,它不經(jīng)歷穩(wěn)態(tài)可塑性,所含內(nèi)質(zhì)網(wǎng)池狀細(xì)胞器(cisternal organelles)更少,并且接收的抑制性輸入也較少。這些結(jié)果揭示了AcD神經(jīng)元的生物學(xué)特性,并表明了AIS結(jié)構(gòu)特征可能因軸突起源不同而存在差異。

 

軸突起始段(AIS)的另一結(jié)構(gòu)特征是包含膜相關(guān)周期性骨架(MPS)的膜下F-actin環(huán)以及胞內(nèi)F-actin斑塊。研究人員為深入解析膜相關(guān)周期性骨架MPS的結(jié)構(gòu)特征,在AcD神經(jīng)元中進(jìn)行了βIV-spectrin與F-actin的dSTORM成像,發(fā)現(xiàn)其軸突起始段(AIS)的βIV-血影蛋白同樣形成環(huán)狀結(jié)構(gòu),相鄰條帶間距約196 nm,且F-肌動(dòng)蛋白與βIV-血影蛋白條帶呈互補(bǔ)分布模式(圖6),該結(jié)果與非AcD神經(jīng)元的既往研究一致,表明AcD神經(jīng)元中樹(shù)突起源的軸突并未改變其AIS區(qū)域的微管和MPS的納米結(jié)構(gòu)。Abbelight 3D 單分子超分辨成像系統(tǒng)的高分辨率和精準(zhǔn)的成像能力,讓軸突起始段這種精細(xì)的結(jié)構(gòu)組成得以清晰展示。

 

 

圖6   使用Abbelight光譜拆分技術(shù)實(shí)現(xiàn)軸突起始段的多通道成像

 

參考文獻(xiàn):

[1] Jackson, R. E., Compans, B., &   Burrone, J. (2022). Correlative Live-Cell and Super-Resolution Imaging to   Link Presynaptic Molecular Organisation With Function. Frontiers in synaptic neuroscience, 14, 830583.

[2] Rigby, M., Grillo, F. W., Compans,   B., Neves, G., Gallinaro, J., Nashashibi, S., ... & Burrone, J. (2023).   Multi-synaptic boutons are a feature of CA1 hippocampal connections in the   stratum oriens. Cell Reports, 42(5).

[3] Horton, S., Mastrolia, V., Jackson,   R. E., Kemlo, S., Machado, P. M. P., Carbajal, M. A., ... & Burrone, J.   (2024). Excitatory and inhibitory synapses show a tight subcellular   correlation that weakens over development. Cell Reports, 43(7).

[4] Bingham, D., Jakobs, C. E., Wernert,   F., Boroni-Rueda, F., Jullien, N., Schentarra, E. M., ... & Leterrier, C.   (2023). Presynapses contain distinct actin nanostructures. Journal of Cell Biology, 222(10), e202208110.

[5] Han, Y., Hacker, D., Donders, B. C., Parperis, C., Thuenauer, R., Leterrier, C., ... & Mikhaylova, M. (2024).   Unveiling the cell biology of hippocampal neurons with dendritic axon origin. Journal of Cell Biology, 224(1), e202403141.

 

 

 

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