細胞接種:根據(jù)實驗目的,將處于對數(shù)生長期的細胞用胰酶消化后,調(diào)整細胞懸液濃度,接種于 96 孔細胞培養(yǎng)板中,每孔接種體積通常為 100 μL,細胞接種數(shù)量根據(jù)細胞類型和實驗要求確定,一般為 1×103 - 1×10?個 / 孔 。將培養(yǎng)板置于細胞培養(yǎng)箱中(37℃,5% CO?),培養(yǎng) 24 小時,使細胞貼壁或適應懸浮培養(yǎng)環(huán)境。
藥物處理(如需):若實驗涉及藥物處理,在細胞培養(yǎng) 24 小時后,向各孔中加入不同濃度梯度的藥物溶液,同時設置空白對照組(只加培養(yǎng)基)和陽性對照組(加入已知具有細胞毒性的藥物),每組設置 3 - 5 個復孔 。將培養(yǎng)板繼續(xù)置于細胞培養(yǎng)箱中孵育相應時間(根據(jù)實驗設計確定,一般為 24 - 72 小時)。
加入 CCK-8 試劑:孵育結(jié)束后,每孔加入 10 μL CCK-8 試劑,輕輕振蕩培養(yǎng)板,使試劑與培養(yǎng)基充分混勻 。將培養(yǎng)板放回細胞培養(yǎng)箱中,繼續(xù)孵育 1 - 4 小時。在此過程中,可每隔 1 小時觀察一次,當甲臜顏色達到合適深度且吸光度值處于檢測線性范圍內(nèi)時,停止孵育。
吸光度測定:使用酶標儀在 450nm 波長處測定各孔的吸光度值(OD 值)。若樣本背景值較高,可同時測定 600 - 650nm 波長處的吸光度值,用 450nm 處的 OD 值減去 600 - 650nm 處的 OD 值,以消除背景干擾 。
細胞狀態(tài)把控:確保用于實驗的細胞處于良好的生長狀態(tài),選擇對數(shù)生長期的細胞進行接種,避免使用老化或生長異常的細胞,否則會影響細胞活力檢測結(jié)果的準確性 。在細胞傳代過程中,嚴格控制傳代次數(shù),一般建議在 10 代以內(nèi)使用。
試劑使用規(guī)范:CCK-8 試劑應避光保存于 4℃冰箱中,使用前需平衡至室溫。避免試劑反復凍融,以免影響 WST-8 的活性 。使用時,盡量減少試劑在空氣中的暴露時間,防止被氧化。
孵育條件優(yōu)化:CCK-8 試劑的孵育時間會因細胞類型、細胞密度和代謝活性的不同而有所差異。對于代謝較慢的細胞,可能需要適當延長孵育時間;而對于代謝旺盛的細胞,孵育時間可適當縮短 。在進行新的細胞系檢測或開展預實驗時,建議設置不同的孵育時間梯度,確定最佳孵育時長。
避免干擾因素:實驗過程中,應避免使用含酚紅的培養(yǎng)基,因為酚紅在 450nm 波長附近有吸收峰,會干擾甲臜的吸光度測定 。若必須使用含酚紅的培養(yǎng)基,需設置空白孔(只加培養(yǎng)基和 CCK-8 試劑)進行對照,以扣除酚紅的影響。此外,一些具有還原性的化合物(如維生素 C、DTT 等)可能會與 WST-8 發(fā)生反應,導致吸光度值異常,在藥物處理實驗中需注意藥物成分對檢測結(jié)果的潛在干擾。
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