臍帶血干細(xì)胞改良HES分離法是將傳統(tǒng)的HES分離法進(jìn)行優(yōu)化和改進(jìn),在后期給予氯化銨將紅細(xì)胞液的體積縮減與分離。詳細(xì)的操作步驟如下:
1.確保操作時(shí)在無菌的環(huán)境下進(jìn)行,因而需要準(zhǔn)備超凈臺(tái)對(duì)穿刺部位進(jìn)行消毒;
2.然后將6%的HES分別按照臍血血量的1/4加入到采集來的血袋中;
3.混合均勻后使用無菌封口膠密封穿刺點(diǎn),倒置與10℃的低溫環(huán)境中靜置6小時(shí);
4.分離好后先將臍血下層的紅細(xì)胞緩慢的放出,取50ml離心管置于其中,然后將血漿放入另一只50ml離心管中;
5.把盛有紅細(xì)胞的離心管,室溫、600r/min、離心5分鐘,把上層的血漿部分吸出后置于另一只盛有血漿的50ml離心管中,將剩下的紅細(xì)胞丟棄即可;
6.把收集血漿的離心管,室溫、600r/min、離心5分鐘,取上清部分保留在50ml離心管中,將下層紅細(xì)胞去除;
7.將上步中收集的上清液室溫、1200r/min、離心10分鐘,去1ml上層血清作為備用,將其他上清去除,將含有核細(xì)胞下層部分濃縮至約5ml,用PBS 將體積調(diào)整至25ml;
8.重復(fù)上步操作3次,將zui終得到的細(xì)胞用PBS調(diào)整體積支5ml;
9.將得到的有核細(xì)胞液與氯化銨破紅細(xì)胞液(NH4CL)按照1:1的比例進(jìn)行混合,室溫、800r/min、離心10分鐘,棄上清所有的下層細(xì)胞用PBS反復(fù)清洗3次,重懸細(xì)胞于上述步驟7作為備用上清液,然后將體積調(diào)整至1000μl;
10.用微量移液器吸取包細(xì)胞稀釋液0.49ml轉(zhuǎn)移至EP管內(nèi),加入10μl細(xì)胞懸液混勻后,在低倍鏡下計(jì)算池四角的四個(gè)大方格的有核細(xì)胞數(shù),將其總數(shù)×125 , 即得到1μl 懸液內(nèi)的有核細(xì)胞數(shù);
11.用微量移液器去0.49mlPBS液移至EP管中,加入有核細(xì)胞懸液10μl混合均勻后加入0.5的臺(tái)盼藍(lán)染液100μl再將其混合均勻后等待2分鐘,制片鏡檢計(jì)數(shù);
12.取NC混懸液50ul用流式細(xì)胞儀檢測人源性CD34 +細(xì)胞的含量,具體的方法如下:
(1)在上機(jī)試管底部加入50μl 樣品;
(2)加入單克隆抗體CD34-PE10ul混勻;
(3)避光室溫孵育20分鐘,加入500μl 紅細(xì)胞裂解液充分混勻;
(4)室溫靜置20分鐘后加入PBS也500μl充分混勻;
(5)上機(jī)檢測。
13.去10ul的有核細(xì)胞懸液進(jìn)行需氧菌、厭氧菌和霉菌培養(yǎng),需氧性與厭氧性雜菌培養(yǎng)均采用硫乙醇酸鹽培養(yǎng)基,霉菌與腐生菌培養(yǎng)均采用改良馬丁培養(yǎng)基,然后將其分別置于30-35攝氏度和20-25℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)14天,后觀察結(jié)果即可。
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