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免疫組化

來源:上海雅吉生物科技有限公司   2015年08月19日 14:25  

實(shí)驗(yàn)方法原理    免疫組織化學(xué)又稱免疫細(xì)胞化學(xué),是指帶顯色劑標(biāo)記的特異性抗體在組織細(xì)胞原位通過抗原抗體反應(yīng)和組織化學(xué)的呈色反應(yīng),對(duì)相應(yīng)抗原進(jìn)行定性、定位、定量測(cè)定的一項(xiàng)新技術(shù)。它把免疫反應(yīng)的特異性、組織化學(xué)的可見性巧妙地結(jié)合起來,借助顯微鏡(包括熒光顯微鏡、電子顯微鏡)的顯像和放大作用,在細(xì)胞、亞細(xì)胞水平檢測(cè)各種抗原物質(zhì)(如蛋白質(zhì)、多肽、酶、激素、病原體以及受體等)。
實(shí)驗(yàn)材料    切片
試劑、試劑盒    細(xì)胞通透液乙醇蒸餾水雙氧水Triton X-100羊血清DABXylene蘇木精染液雙蒸水中性樹膠
儀器、耗材    微波爐吹風(fēng)機(jī)組化筆濕盒烤箱振蕩器染缸光學(xué)顯微鏡純木漿衛(wèi)生紙計(jì)時(shí)器通風(fēng)櫥
實(shí)驗(yàn)步驟    
一.  試劑配制 

1. 0.01 M PBS(pH 7.34 )

9.0 g NaCl + 50 ml 0.2 M PB加雙蒸水至1000 ml;1000 ml 0.2 M PB (pH 7.4)=5.93 g NaH2PO4·2H2O+58.02 g Na2HPO4·12H2O in 1000 ml雙蒸水或=190 ml A + 810 ml B(A. 0.2 M NaH2PO4·2H2O:15.6 g in 500 ml ddH2O;B. 0.2 M Na2HPO4·12H2O:71.632 g in 1000 ml dH2O)。

2. Citrate Buffered Saline(0.01 M檸檬酸緩沖液,pH6.0)

28 ml A + 72 ml B + 200 ml ddH2O(A.Citrate acid(檸檬酸):10.5 g 加雙蒸水至1000 ml;B.Citrate sodium(檸檬酸鈉):29.41 g加雙蒸水至1000 ml)。

3. 細(xì)胞通透液

由終濃度分別為0.3%雙氧水和0.3%Triton X-100混合而成。配制方法是先用微波加熱的36 ml PBS,再接著加120 ul TritonX-100,并加熱一會(huì)兒,冷卻至臨用前加0.4 ml 30%H2O2。

4. 5%羊血清或封閉血清,用PBS稀釋。

5. 含0.03%H2O2的0.05%DAB(避光):用20×DAB(1%,10 mg/ml)5 ul+0.1 ul 30% H2O2+95 ul PBS。

6. 一抗、二抗均用PBS稀釋。

7. Xylene、梯度Ethanol(100%×2、95%、80%、70%、50%)、雙蒸水、中性樹膠(封裱劑)。

8. 蘇木精染液

二.  操作步驟

1.  脫蠟、水化 

(1)60 ℃×20 min→Xylene 2 ×10 minutes;

(2)100% absolute ethanol:2 ×5 minutes;

(3)95% ethanol 2 minutes; 

(4)80% ethanol 2 minutes;

(5)70% ethanol 2 minutes;

(6) distilled water:5 min;

(7)PBS洗3次×3 min。

2、細(xì)胞通透、封閉內(nèi)源性過氧化物酶

(1)用封閉通透液浸潤切片30 min(RT避光)。配法是用預(yù)熱40 ml PBS加120 ul TritonX-100加熱幾分鐘后,臨用前加400 ul 30%H2O2。

(2) PBS溶液洗3次×3 min。

3、抗原修復(fù)暴露抗原決定族

(1) 切片放入0.01 M檸檬酸鈉緩沖溶液(pH6.0)后,在微波爐里高火4 min至沸騰后,再加熱約6 min×4次,每次間隔補(bǔ)足液體,防止干片。

4、封閉非特異性蛋白 

(1) PBS溶液洗3次×3 min;

(2)將切片取出,周圍水分用濾紙吸干,用組化筆在組織周圍畫上圈,在圓圈內(nèi)組織滴入5%羊血清(與二抗來源一致)后放入濕盒中,室溫30(10~30)min;

5、一抗孵育 

(1) 甩去切片上的羊血清,用濾紙擦干組織周圍殘留血清,直接加入已稀釋的一抗(1:250、500、1000)后,放入濕盒中室溫1小時(shí),然后4度,從冰箱中取出需37 ℃復(fù)溫45 min。

6、二抗孵育  

(1)將一抗倒掉并用PBS洗5 min×5次;

(2) 用濾紙將圓圈周圍的水吸去,加入已稀釋的二抗后放入37 ℃恒溫烤箱中30 min(回收)。

(3)用PBS洗5次×5 min;

7、SP反應(yīng)

(1) 加入SP后放入37度烤箱中30 min。

(2) 用PBS洗5次×5 min; 

8、顯色

(1)加入DAB(快速滴入,觀察染色情況,倒掉染液),顯色時(shí)間控制在約5 min(3~10 min),由鏡下觀察顏色控制時(shí)間。
0.05%DAB(避光)(1:20儲(chǔ)備液):5 ul 20×DAB+0.1 ul 30% H2O2+95 ul PBS。1%DAB儲(chǔ)備液的配制:50mg DAB+5 ml 0.05 mol/L PBS充分溶解,-20 ℃保存。 

9、復(fù)染、脫水、透明、封片

(1)用PBS 3次×3min后,用雙蒸水洗5 min;

(2)加一大滴蘇木素染液,胞核蛋白染幾秒,胞漿或胞膜蛋白染20 s后自來水沖洗,雙蒸水洗5 min,再用PBS返藍(lán)5 min。

(3)脫水


(4)透明

Xylene 1×(1-2) min→Xylene 2×(1-2) min

(5) 封片

中性樹膠。
收起 
注意事項(xiàng)    
1. 蘇木素復(fù)染時(shí)間需要摸索,尤其陽性染色也在細(xì)胞核上。

2. DAB顯色時(shí)間需要達(dá)到*化,鏡下觀察達(dá)到陽性染色明顯但背景不太深。

3. 抗體孵育時(shí)間和抗體濃度需要摸索。尤其一抗孵育在4度。

4. 切片脫蠟和水化要充分;加反應(yīng)液時(shí)要覆蓋組織充分;每次加液前甩干洗滌液,但又防止干片;用組化筆畫圈時(shí)盡量畫大一點(diǎn),否則墨水排斥液體,引起片周邊干片。

5. 片子著色不均勻的原因如下:

(1) 脫蠟不充分。可以60 ℃烤20 min,立即放入新鮮的xylene1;

(2)水化不全。應(yīng)經(jīng)常配制新鮮的梯度乙醇;

(3)抗體沒混勻。用移液器充分混勻一抗/二抗等試劑;

(4) 抗體孵育時(shí),切片放傾斜;

(5)抗體孵育后PBS沖洗不充分。

(6) 制片厚薄不均勻等問題。染片盒不平,切片傾斜。

6. 一抗從4 ℃拿出后,為什么有人說要37度復(fù)溫,目的是什么?

(1) 一方面,防止切片從4 ℃直接放入PBS易脫片;

(2)另一方面,使抗原抗體結(jié)合更穩(wěn)定。一般不需要,但對(duì)表達(dá)較弱的抗原可能有用,4 ℃和37 ℃度時(shí)分子運(yùn)動(dòng)方式不同,前者分子碰撞機(jī)率和運(yùn)動(dòng)速度小于后者,后者結(jié)合更快,但敏感性也提高了并易造成非特異染色。

7. 切片染色后背景太深,不易區(qū)分特異性與非特異性著色?

(1) 抗體孵育時(shí)間過長、抗體濃度高易增加背景著色。這可通過縮短一抗/二抗孵育時(shí)間、稀釋抗體來控制;

(2) 一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,建議試用單克隆抗體看看;

(3)內(nèi)源性過氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高,需要通過延長滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來降低背景染色;

(4)非特異性組分與抗體結(jié)合,這需要通過延長二抗來源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來加強(qiáng)封閉效果;

(5) DAB顯色時(shí)間過長或濃度過高;

(6) PBS沖洗不充分,殘留抗體結(jié)果增強(qiáng)著色;

(7) 標(biāo)本染色過程中出現(xiàn)干片,易增強(qiáng)非特異性著色。

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